| 摘要 | 第3-6页 |
| abstract | 第6-9页 |
| 英文缩写词与英汉对照表 | 第10-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-62页 |
| 1.1 水稻叶片形态的研究进展 | 第17-27页 |
| 1.1.1 水稻叶片的形态和结构 | 第18-19页 |
| 1.1.2 水稻叶片的发育 | 第19-22页 |
| 1.1.2.1 水稻叶原基的发育 | 第19-21页 |
| 1.1.2.2 与叶原基发育相关的基因 | 第21-22页 |
| 1.1.3 叶极性的建立 | 第22-27页 |
| 1.1.3.1 叶片背-腹轴的发育 | 第24-25页 |
| 1.1.3.2 叶片基-顶轴的发育 | 第25-26页 |
| 1.1.3.3 叶片中-边轴的发育 | 第26-27页 |
| 1.2 植物内源激素与叶的发育 | 第27-30页 |
| 1.2.1 生长素与叶及叶中维管束发育的关系 | 第27-29页 |
| 1.2.2 赤霉素与维管束形成层的关系 | 第29页 |
| 1.2.3 细胞分裂素与维管束形成层的关系 | 第29页 |
| 1.2.4 乙稀与维管束形成层的关系 | 第29-30页 |
| 1.3 水稻叶片形态和株型的关系 | 第30-32页 |
| 1.4 水稻窄叶性状的基因定位研究进展 | 第32-41页 |
| 1.5 植物热激蛋白的研究进展 | 第41-50页 |
| 1.5.1 植物热激蛋白的产生 | 第42-43页 |
| 1.5.2 热激蛋白的分类 | 第43-45页 |
| 1.5.3 热激蛋白的特点 | 第45-46页 |
| 1.5.4 热激蛋白的功能 | 第46-50页 |
| 1.6 DNAJ蛋白的研究进展 | 第50-60页 |
| 1.6.1 DNAJ蛋白的特征 | 第50-51页 |
| 1.6.2 DNAJ蛋白的分类和命名 | 第51-52页 |
| 1.6.3 DNAJ蛋白的功能结构域 | 第52-54页 |
| 1.6.4 DNAJ蛋白的分布 | 第54页 |
| 1.6.5 DNAJ蛋白的功能 | 第54-57页 |
| 1.6.5.1 人、动物和致病菌中DNAJ蛋白的功能 | 第54-55页 |
| 1.6.5.2 植物中DNAJ蛋白的功能 | 第55-57页 |
| 1.6.6 水稻中DNAJ蛋白的研究进展 | 第57-60页 |
| 1.7 本研究的目的和意义 | 第60-62页 |
| 第二章 水稻窄叶材料的形态和生理学分析 | 第62-74页 |
| 2.1 材料与方法 | 第62-64页 |
| 2.1.1 材料 | 第62-63页 |
| 2.1.2 实验设计与性状调查 | 第63页 |
| 2.1.3 石蜡切片观察 | 第63页 |
| 2.1.4 扫描电镜观察 | 第63-64页 |
| 2.1.5 内源激素的测定 | 第64页 |
| 2.2 结果与分析 | 第64-73页 |
| 2.2.1 实验材料的农艺性状表现 | 第64-67页 |
| 2.2.2 实验材料的叶脉/维管束显微观察 | 第67-69页 |
| 2.2.3 实验材料叶片上表皮的扫描电镜观察 | 第69-72页 |
| 2.2.4 实验材料的内源激素含量测定 | 第72-73页 |
| 2.3 小结与讨论 | 第73-74页 |
| 第三章 水稻窄叶基因nal11的定位 | 第74-83页 |
| 3.1 材料与方法 | 第75-76页 |
| 3.1.1 材料 | 第75页 |
| 3.1.2 水稻DNA的提取 | 第75页 |
| 3.1.3 SSR和InDel标记的开发 | 第75-76页 |
| 3.1.4 F_2作图群体的基因分型检测 | 第76页 |
| 3.1.5 遗传作图 | 第76页 |
| 3.2 结果与分析 | 第76-82页 |
| 3.2.1 窄叶性状的遗传分析 | 第76页 |
| 3.2.2 亲本材料的多态性分析 | 第76-77页 |
| 3.2.3 nal11的初步定位 | 第77-79页 |
| 3.2.4 nal11的精细定位 | 第79-82页 |
| 3.3 小结与讨论 | 第82-83页 |
| 第四章 水稻窄叶基因nal11的克隆 | 第83-102页 |
| 4.1 材料与方法 | 第83-87页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第83页 |
| 4.1.2 水稻DNA的提取 | 第83-84页 |
| 4.1.3 水稻cDNA的制备 | 第84-85页 |
| 4.1.3.1 水稻总RNA的提取 | 第84页 |
| 4.1.3.2 mRNA的反转录 | 第84-85页 |
| 4.1.4 物理图谱的构建与注释 | 第85页 |
| 4.1.5 候选基因的序列扩增与序列分析 | 第85-86页 |
| 4.1.6 NAL11的克隆与序列分析 | 第86-87页 |
| 4.1.7 NAL11基因的启动子序列分析 | 第87页 |
| 4.2 结果与分析 | 第87-100页 |
| 4.2.1 定位区间的基因注释 | 第87-88页 |
| 4.2.2 候选基因的筛选 | 第88-90页 |
| 4.2.3 候选基因的克隆分析 | 第90-93页 |
| 4.2.4 候选基因的蛋白质分析 | 第93-95页 |
| 4.2.5 NAL11的系统进化分析 | 第95-96页 |
| 4.2.6 NAL11在水稻基因组中的同源性分析 | 第96-100页 |
| 4.2.7 NAL11基因的启动子序列分析 | 第100页 |
| 4.3 小结与讨论 | 第100-102页 |
| 第五章 水稻窄叶基因nal11的初步功能研究 | 第102-133页 |
| 5.1 材料与方法 | 第102-114页 |
| 5.1.1 水稻材料 | 第102页 |
| 5.1.2 所用的试剂、质粒和菌株 | 第102-103页 |
| 5.1.3 大肠杆菌感受态细胞的制备和转化 | 第103页 |
| 5.1.4 农杆菌感受态细胞的制备和转化 | 第103-104页 |
| 5.1.5 NAL11的遗传转化载体的构建 | 第104-111页 |
| 5.1.5.1 互补载体的构建 | 第104-106页 |
| 5.1.5.2 过量表达载体的构建 | 第106-107页 |
| 5.1.5.3 Cas9定点编辑载体的构建 | 第107-108页 |
| 5.1.5.4 GUS载体的构建 | 第108-110页 |
| 5.1.5.5 GFP载体的构建 | 第110-111页 |
| 5.1.6 遗传转化 | 第111-114页 |
| 5.1.6.1 实验用到的各种培养基 | 第111-112页 |
| 5.1.6.2 水稻愈伤组织的诱导和继代 | 第112页 |
| 5.1.6.3 农杆菌介导法转化水稻 | 第112-113页 |
| 5.1.6.4 愈伤组织的筛选和分化 | 第113页 |
| 5.1.6.5 转基因植株的鉴定 | 第113页 |
| 5.1.6.6 转基因植株GUS基因的组织化学染色 | 第113-114页 |
| 5.1.6.7 水稻原生质体的制备与转化 | 第114页 |
| 5.2 结果与分析 | 第114-131页 |
| 5.2.1 基因互补载体的构建 | 第115-117页 |
| 5.2.2 过量表达载体的构建 | 第117页 |
| 5.2.3 Cas9定点编辑载体的构建 | 第117-119页 |
| 5.2.4 GUS表达载体的构建 | 第119-120页 |
| 5.2.5 GFP表达载体的构建 | 第120-121页 |
| 5.2.6 遗传转化及转基因植株的鉴定 | 第121-129页 |
| 5.2.6.1 基因互补转基因植株的鉴定 | 第122页 |
| 5.2.6.2 过量表达转基因植株的鉴定 | 第122-125页 |
| 5.2.6.3 Cas9定点编辑转基因植株的鉴定 | 第125-128页 |
| 5.2.6.4 GUS转基因植株的鉴定 | 第128-129页 |
| 5.2.7 转基因植株GUS基因的组织化学染色 | 第129-130页 |
| 5.2.8 转基因植株GFP蛋白的电镜观察 | 第130-131页 |
| 5.3 小结与讨论 | 第131-133页 |
| 第六章 窄叶基因nal11的表达谱分析 | 第133-153页 |
| 6.1 材料与方法 | 第135-138页 |
| 6.1.1 实验材料与实验设计 | 第135页 |
| 6.1.2 nal11的RT-PCR表达分析 | 第135-136页 |
| 6.1.3 nal11的荧光定量分析 | 第136页 |
| 6.1.4 转录组测序分析 | 第136-138页 |
| 6.2 结果与分析 | 第138-151页 |
| 6.2.1 nal11的RT-PCR表达分析 | 第138-139页 |
| 6.2.2 nal11的real-time荧光定量分析 | 第139-140页 |
| 6.2.3 转录组测序分析 | 第140-151页 |
| 6.2.3.1 测序样品质量评估 | 第140-141页 |
| 6.2.3.2 测序样品结果统计 | 第141-143页 |
| 6.2.3.3 基因覆盖度统计 | 第143-144页 |
| 6.2.3.4 差异表达基因的筛选 | 第144-146页 |
| 6.2.3.5 差异表达基因的聚类分析 | 第146-148页 |
| 6.2.3.6 差异表达基因的Pathway显著性富集分析 | 第148-150页 |
| 6.2.3.7 NAL11转录本的确认及表达量分析 | 第150-151页 |
| 6.3 小结与讨论 | 第151-153页 |
| 第七章 全文结论与讨论 | 第153-167页 |
| 7.1 全文结论 | 第153-155页 |
| 7.2 综合讨论 | 第155-166页 |
| 7.2.1 nal11与其他窄叶基因的关系 | 第155-157页 |
| 7.2.2 水稻叶宽与内源激素的关系 | 第157-164页 |
| 7.2.3 新型热激蛋白基因NAL11在水稻育种中的应用 | 第164-166页 |
| 7.3 本研究的创新之处 | 第166页 |
| 7.4 进一步的研究设想 | 第166-167页 |
| 致谢 | 第167-168页 |
| 参考文献 | 第168-181页 |
| 附录I 通过 5’和 3’RACE获得的NAL11基因的全长cDNA序列 | 第181-183页 |
| 附录II 生长素相关差异表达基因（上调） | 第183-191页 |
| 附录III 生长素相关差异表达基因（下调） | 第191-198页 |
