| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 引言 | 第10-23页 |
| 1.1 种群动态模型 | 第10-11页 |
| 1.1.1 种群动态研究的发展 | 第10-11页 |
| 1.1.2 种群动态模型的研究进展 | 第11页 |
| 1.2 性诱剂在昆虫中的应用 | 第11-12页 |
| 1.2.1 性诱剂的发展与应用 | 第11-12页 |
| 1.2.2 性诱剂在小菜蛾种群动态中的应用 | 第12页 |
| 1.3 小菜蛾的抗药性 | 第12-17页 |
| 1.3.1 小菜蛾抗性现状 | 第12-13页 |
| 1.3.2 小菜蛾抗性机理研究 | 第13-16页 |
| 1.3.2.1 代谢抗性 | 第13-14页 |
| 1.3.2.2 靶标位点突变 | 第14页 |
| 1.3.2.3 表皮穿透作用降低 | 第14-15页 |
| 1.3.2.4 ABC转运蛋白 | 第15-16页 |
| 1.3.3 小菜蛾对阿维菌素抗性 | 第16页 |
| 1.3.4 阿维菌素抗性机制 | 第16-17页 |
| 1.3.5 小菜蛾阿维菌素抗性发展 | 第17页 |
| 1.4 RNA干扰技术 | 第17-20页 |
| 1.4.1 RNA干扰作用原理 | 第18页 |
| 1.4.2 RNA干扰技术的应用 | 第18-20页 |
| 1.4.2.1 RNA干扰技术在医学中的应用 | 第18-19页 |
| 1.4.2.2 RNA干扰技术在昆虫防治领域的应用 | 第19-20页 |
| 1.4.2.3 RNA干扰技术在昆虫抗药性中的应用 | 第20页 |
| 1.5 本研究的内容和目的意义 | 第20-23页 |
| 1.5.1 研究的内容和方法 | 第20-21页 |
| 1.5.2 技术路线 | 第21页 |
| 1.5.3 研究的目的意义 | 第21-23页 |
| 第二章 基于DYMEX模型的小菜蛾种群动态分析 | 第23-43页 |
| 2.1 试验地点概况 | 第23页 |
| 2.2 试验材料 | 第23-24页 |
| 2.3 试验方法 | 第24-26页 |
| 2.3.1 气象资料获取方法 | 第24页 |
| 2.3.2 小菜蛾田间实际管理数据收集 | 第24页 |
| 2.3.3 性诱剂诱捕田间小菜蛾试验方法 | 第24页 |
| 2.3.4 不同模块模拟分析方法 | 第24-26页 |
| 2.3.4.1 DYMEX分析模型关键组成部分 | 第24-25页 |
| 2.3.4.2 作物模块分析方法 | 第25页 |
| 2.3.4.3 小菜蛾生活史模块分析方法 | 第25-26页 |
| 2.3.4.4 杀虫剂的施用模块分析方法 | 第26页 |
| 2.3.4.5 小菜蛾种群场景模拟分析方法 | 第26页 |
| 2.4 结果与分析 | 第26-40页 |
| 2.4.1 小菜蛾田间防治 | 第26-28页 |
| 2.4.2 小菜蛾田间发生动态 | 第28-30页 |
| 2.4.3 小菜蛾春季迁入量与全年发生量的关系 | 第30页 |
| 2.4.4 种群动态模拟 | 第30-40页 |
| 2.4.4.1 田间种植模式模拟 | 第30-31页 |
| 2.4.4.2 季节性物候学模拟 | 第31-35页 |
| 2.4.4.3 种群丰度趋势模拟 | 第35-38页 |
| 2.4.4.4 基于四种场景小菜蛾种群数量模拟 | 第38-40页 |
| 2.5 结论与讨论 | 第40-43页 |
| 第三章 PxPgp1基因在小菜蛾对阿维菌素抗性中的作用 | 第43-57页 |
| 3.1 试验材料和仪器 | 第43-45页 |
| 3.1.1 供试昆虫 | 第43-44页 |
| 3.1.2 供试蔬菜 | 第44页 |
| 3.1.3 试验试剂和试剂盒 | 第44页 |
| 3.1.3.1 生物测定测药剂 | 第44页 |
| 3.1.3.2 主要试剂及试剂盒 | 第44页 |
| 3.1.4 主要仪器 | 第44-45页 |
| 3.1.5 培养基及常用溶液 | 第45页 |
| 3.1.6 引物和测序 | 第45页 |
| 3.1.7 生物信息学工具 | 第45页 |
| 3.2 试验方法 | 第45-51页 |
| 3.2.1 小菜蛾室内饲养及阿维菌素汰选方法 | 第45-46页 |
| 3.2.1.1 小菜蛾的室内饲养 | 第45页 |
| 3.2.1.2 阿维菌素抗性小菜蛾的汰选 | 第45-46页 |
| 3.2.1.3 阿维菌素对小菜蛾的生物测定 | 第46页 |
| 3.2.2 小菜蛾PxPgp1基因的RNA干扰方法 | 第46-51页 |
| 3.2.2.1 RNA的提取 | 第46页 |
| 3.2.2.2 cDNA的合成 | 第46-47页 |
| 3.2.2.3 dsRNA合成引物的筛选 | 第47页 |
| 3.2.2.4 目的产物的扩增程序 | 第47页 |
| 3.2.2.5 PCR产物的回收与纯化 | 第47页 |
| 3.2.2.6 PCR产物与pEASY-T5载体的连接、转化 | 第47-48页 |
| 3.2.2.7 阳性克隆检测 | 第48页 |
| 3.2.2.8 序列测定 | 第48-49页 |
| 3.2.2.9 dsRNA的体外合成 | 第49-50页 |
| 3.2.2.10 dsRNA的显微注射 | 第50页 |
| 3.2.2.11 基因相对表达量分析 | 第50页 |
| 3.2.2.12 小菜蛾PxPgp1基因干扰后对阿维菌素的敏感性测定 | 第50-51页 |
| 3.3 结果与分析 | 第51-55页 |
| 3.3.1 小菜蛾阿维菌素抗性筛选 | 第51-52页 |
| 3.3.2 小菜蛾PxPgp1基因的RNA干扰结果 | 第52-55页 |
| 3.3.2.1 小菜蛾RNA的提取 | 第52页 |
| 3.3.2.2 dsEGFP的DNA模板 | 第52页 |
| 3.3.2.3 小菜蛾PxPgp1基因RNA干扰引物筛选 | 第52-53页 |
| 3.3.2.4 小菜蛾PxPgp1基因的RNA干扰 | 第53-54页 |
| 3.3.2.5 小菜蛾PxPgp1基因沉默后对阿维菌素的敏感性 | 第54-55页 |
| 3.4 结论与讨论 | 第55-57页 |
| 第四章 全文结论 | 第57-59页 |
| 致谢 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-72页 |
| 附录 | 第72-81页 |
| 图版 | 第81-83页 |
