摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
缩略词表 | 第12-14页 |
第一章 文献综述 | 第14-21页 |
1 植物DNA甲基化转移酶和去甲基化酶 | 第14-17页 |
1.1 DNA甲基转移酶 | 第14-16页 |
1.1.1 Methyltransferase1(MET1)基因 | 第15页 |
1.1.2 Domains Rearranged Methyltransferase 2(DRM2)基因 | 第15-16页 |
1.1.3 Chromomethylase 3(CMT3)基因 | 第16页 |
1.1.4 Dnmt2methyltransferase基因 | 第16页 |
1.2 DNA去甲基化酶 | 第16-17页 |
2 植物DNA甲基化和去甲基化分子机制 | 第17-19页 |
2.1 DNA甲基化分子机制 | 第17-18页 |
2.2 DNA去甲基化分子机制 | 第18-19页 |
3 DNA甲基化和去甲基化在果实中研究进展 | 第19-20页 |
3.1 DNA甲基化基因在果实发育中的作用 | 第19-20页 |
3.2 DNA去甲基化基因在果实发育中的作用 | 第20页 |
4 本课题研究的目的和意义 | 第20-21页 |
第二章 DNA甲基化和去甲基化基因的分离及在果实中的表达 | 第21-39页 |
1 实验材料 | 第22-23页 |
1.1 植物材料 | 第22页 |
1.2 载体与菌株 | 第22页 |
1.3 试剂与仪器 | 第22-23页 |
2 实验方法 | 第23-25页 |
2.1 蓝莓总RNA提取及sscDNA合成 | 第23页 |
2.1.1 蓝莓总RNA提取 | 第23页 |
2.1.2 sscDNA合成 | 第23页 |
2.2 VcMET1、VcDRM2、VcCMT3和VcDME1基因cDNA分离及序列分析 | 第23-24页 |
2.3 VcMET1、VcDRM2、VcCMT3和VcDME1基因在果实发育中的表达分析 | 第24-25页 |
3 结果与分析 | 第25-36页 |
3.1 VcMET1、VcDRA42、VcCMT3和VcDME1基因的分离与序列 | 第25页 |
3.2 VcMET1、VcDRM2、VcCMT3和VcDME1生物信息学分析 | 第25-35页 |
3.3 VcMET1、VcDRM2、VcCMT3和VcDME1基因在果实发育进程中的表达分析 | 第35-36页 |
4 讨论 | 第36-39页 |
第三章 花青苷含量的测定和其合成相关基因的分离及在果实中的表达 | 第39-49页 |
1 实验材料 | 第40页 |
2 实验方法 | 第40-43页 |
2.1 蓝莓果实花青苷含量的测定 | 第40-41页 |
2.1.1 缓冲液的配置 | 第40-41页 |
2.1.2 提取方法 | 第41页 |
2.2 总RNA的提取 | 第41页 |
2.3 蓝莓花青苷合成相关基因的分离 | 第41-43页 |
2.4 蓝莓花青苷合成相关基因序列的生物信息学分析 | 第43页 |
2.5 蓝莓花青苷合成相关基因在果实发育进程中的表达分析 | 第43页 |
3 结果与分析 | 第43-46页 |
3.1 蓝莓果实花青苷含量的测定 | 第43-44页 |
3.2 RNA质量分析 | 第44页 |
3.3 蓝莓花青苷合成相关基因的分离 | 第44-45页 |
3.4 蓝莓花青苷合成相关基因的生物信息学分析 | 第45页 |
3.5 蓝莓花青苷合成相关基因在果实发育进程中的表达分析 | 第45-46页 |
4 讨论 | 第46-49页 |
第四章 花青苷合成相关基因启动子的分离及甲基化对花青苷合成的影响 | 第49-58页 |
1 实验材料 | 第50页 |
1.1 材料 | 第50页 |
1.2 试剂与仪器 | 第50页 |
2 实验方法 | 第50-52页 |
2.1 蓝莓花青苷合成相关基因启动子的分离 | 第50页 |
2.2 蓝莓花青苷合成相关基因启动子序列的生物信息学分析 | 第50-51页 |
2.3 蓝莓果实基因组DNA甲基化处理及其启动子的分离 | 第51-52页 |
3 结果与分析 | 第52-56页 |
3.1 蓝莓花青苷合成相关基因启动子的分离 | 第52页 |
3.2 蓝莓花青苷合成相关基因启动子的生物信息学分析 | 第52页 |
3.3 蓝莓花青苷合成相关基因启动子序列的甲基化分析 | 第52-56页 |
4 讨论 | 第56-58页 |
第五章 结论与展望 | 第58-60页 |
参考文献 | 第60-70页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第70-71页 |
致谢 | 第71-73页 |