致谢 | 第5-6页 |
摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-9页 |
1 文献综述 | 第15-23页 |
1.1 油菜 | 第15页 |
1.2 除草剂 | 第15-16页 |
1.3 二氯喹啉酸(Quinclorac) | 第16-17页 |
1.4 除草剂降解 | 第17页 |
1.5 微生物降解 | 第17-18页 |
1.6 二氯喹啉酸降解 | 第18-19页 |
1.7 除草剂残留的检测技术 | 第19-20页 |
1.7.1 生物测定法 | 第19页 |
1.7.2 仪器分析法 | 第19-20页 |
1.8 二氯喹啉酸的检测技术 | 第20-21页 |
1.8.1 二氯喹啉酸残留检测技术 | 第20页 |
1.8.2 样品前处理方法 | 第20-21页 |
1.9 全基因组测序 | 第21-23页 |
2 引言 | 第23-25页 |
2.1 研究目的与研究背景 | 第23-24页 |
2.2 技术路线 | 第24页 |
2.3 研究内容 | 第24-25页 |
3 材料与方法 | 第25-30页 |
3.1 试验材料 | 第25页 |
3.1.1 供试土壤 | 第25页 |
3.1.2 供试品种 | 第25页 |
3.1.3 试验试剂 | 第25页 |
3.1.4 培养基及试剂配方 | 第25页 |
3.2 二氯喹啉酸降解菌的筛选与鉴定方法 | 第25-28页 |
3.2.1 降解菌的富集培养 | 第25-26页 |
3.2.2 降解菌的分离纯化培养 | 第26页 |
3.2.3 降解菌生长曲线的测定 | 第26页 |
3.2.4 降解菌悬液的制备 | 第26页 |
3.2.5 降解菌的降解率测定 | 第26页 |
3.2.6 添加回收试验 | 第26页 |
3.2.7 高效液相色谱条件 | 第26-27页 |
3.2.8 降解菌的形态学鉴定 | 第27页 |
3.2.9 降解菌的生理生化特性鉴定 | 第27页 |
3.2.10 降解菌的分子生物学鉴定 | 第27-28页 |
3.3 二氯喹啉酸降解菌的降解特性研究 | 第28页 |
3.3.1 培养时间对降解菌株降解效果的影响 | 第28页 |
3.3.2 初始添加浓度对降解菌株降解效果的影响 | 第28页 |
3.3.3 温度对降解菌株降解效果的影响 | 第28页 |
3.3.4 pH值对降解菌株降解效果的影响 | 第28页 |
3.4 降解菌对油菜苗期二氯喹啉酸药害的修复研究 | 第28-30页 |
3.4.1 种子的消毒与催芽 | 第28-29页 |
3.4.2 油菜品种筛选试验 | 第29页 |
3.4.3 种子萌发试验 | 第29页 |
3.4.4 油菜苗期水培试验 | 第29页 |
3.4.5 二氯喹啉酸对油菜苗期叶绿素含量、根系生长、根重和根系生长的影响及降解菌对其修复研究 | 第29-30页 |
4 结果与分析 | 第30-51页 |
4.1 二氯喹啉酸标准曲线的制作 | 第30-31页 |
4.2 添加回收率试验结果 | 第31页 |
4.3 二氯喹啉酸降解菌的筛选 | 第31-32页 |
4.4 菌株D22和菌株D23的生长曲线测定 | 第32页 |
4.5 二氯喹啉酸降解菌D22和D23的菌落形态学鉴定 | 第32-34页 |
4.5.1 降解菌D22和D23的菌落形态观察 | 第32-33页 |
4.5.2 降解菌D22和D23的菌体形态观察 | 第33-34页 |
4.6 降解菌D22和D23的生理生化鉴定 | 第34-35页 |
4.7 降解菌的分子生物学鉴定结果 | 第35-37页 |
4.8 降解菌的降解特性研究 | 第37-43页 |
4.8.1 培养时间对降解菌D22和D23的降解效果的影响 | 第37-39页 |
4.8.2 初始添加浓度对降解菌D22和D23的降解效果的影响 | 第39-40页 |
4.8.3 培养温度对降解菌D22和D23的降解效果 | 第40-42页 |
4.8.4 pH对降解菌D22和D23的降解效果分析 | 第42-43页 |
4.9 二氯喹啉酸抗性品种的筛选 | 第43-44页 |
4.10 降解菌的对油菜苗期二氯喹啉酸药害的修复 | 第44-51页 |
4.10.1 对叶绿素、根颈长和根鲜重的影响 | 第47-49页 |
4.10.2 对油菜根系的影响 | 第49-51页 |
5 讨论 | 第51-54页 |
6 结论 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-61页 |
附录A | 第61-62页 |
附录B | 第62-63页 |
作者简介 | 第63页 |