摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-7页 |
1 文献综述 | 第10-17页 |
1.1 湖栖鳍虾虎鱼(Gobiopteruslacustris)研究进展 | 第10页 |
1.2 遗传多样性 | 第10-11页 |
1.3 鱼类体色的研究 | 第11-14页 |
1.3.1 黑色素的合成 | 第12-13页 |
1.3.2 影响鱼类体色的主要因素 | 第13-14页 |
1.4 内分泌干扰物(EDCs) | 第14-15页 |
1.4.1 内分泌干扰物(EDCs)概述 | 第14页 |
1.4.2 EDCs的危害 | 第14-15页 |
1.4.3 EDCs的生物标志物 | 第15页 |
1.5 研究目的与意义 | 第15-17页 |
2 湖栖鳍虾虎鱼形态特征 | 第17-22页 |
2.1 材料与方法 | 第17页 |
2.1.1 样本采集 | 第17页 |
2.1.2 形态测量 | 第17页 |
2.2 实验结果 | 第17-19页 |
2.3 讨论 | 第19-22页 |
3 湖栖鳍虾虎鱼皮肤和性腺转录组测序分析 | 第22-36页 |
3.1 实验材料 | 第22-23页 |
3.1.1 实验样本 | 第22页 |
3.1.2 主要试剂与仪器 | 第22-23页 |
3.2 实验方法 | 第23-26页 |
3.2.1 总RNA的提取及检测 | 第23-24页 |
3.2.2 cDNA文库的构建及转录组测序 | 第24页 |
3.2.3 测序数据的生物信息学分析 | 第24页 |
3.2.4 湖栖鳍虾虎鱼线粒体DNA全序列分析 | 第24-26页 |
3.3 结果与分析 | 第26-35页 |
3.3.1 转录本拼接 | 第26页 |
3.3.2 基因功能注释 | 第26-28页 |
3.3.3 SSR分析 | 第28-31页 |
3.3.4 差异基因的筛选 | 第31-32页 |
3.3.5 差异基因GO富集分析 | 第32-34页 |
3.3.6 差异基因KEGG富集分析 | 第34页 |
3.3.7 湖栖鳍虾虎鱼线粒体DNA全序列分析 | 第34-35页 |
3.4 讨论 | 第35-36页 |
4 湖栖鳍虾虎鱼群体遗传多样性的微卫星DNA分析 | 第36-46页 |
4.1 实验材料 | 第36页 |
4.1.1 实验材料 | 第36页 |
4.1.2 试剂与仪器 | 第36页 |
4.2 实验方法 | 第36-37页 |
4.2.1 湖栖鳍虾虎鱼基因组DNA的提取与检测 | 第36页 |
4.2.2 微卫星序列的获得与引物合成 | 第36-37页 |
4.2.3 微卫星引物的筛选 | 第37页 |
4.2.4 PCR扩增与微卫星检测 | 第37页 |
4.2.5 数据分析 | 第37页 |
4.3 结果与分析 | 第37-42页 |
4.3.1 微卫星引物的筛选结果 | 第37-38页 |
4.3.2 遗传多样性分析 | 第38-41页 |
4.3.3 群体间遗传分化分析 | 第41-42页 |
4.4 讨论 | 第42-46页 |
5 壬基酚对湖栖鳍虾虎鱼黑色素合成的影响 | 第46-53页 |
5.1 实验材料 | 第46页 |
5.1.1 实验动物 | 第46页 |
5.1.2 主要试剂与仪器 | 第46页 |
5.2 实验方法 | 第46-49页 |
5.2.1 壬基酚暴露实验 | 第47页 |
5.2.2 总RNA的提取与检测 | 第47页 |
5.2.3 引物设计 | 第47页 |
5.2.4 反转录 | 第47-48页 |
5.2.5 RT-PCR标准曲线扩增 | 第48页 |
5.2.6 转录组测序结果的qPCR验证 | 第48-49页 |
5.2.7 壬基酚暴露处理对camk、erα和erβ基因的影响 | 第49页 |
5.2.8 数据分析 | 第49页 |
5.3 结果与分析 | 第49-51页 |
5.3.1 标准曲线分析 | 第49页 |
5.3.2 转录组数据qPCR验证 | 第49-50页 |
5.3.3 壬基酚对湖栖鳍虾虎鱼透明与黑色皮肤中camk表达的影响 | 第50-51页 |
5.3.4 壬基酚对雄性湖栖鳍虾虎鱼肝脏中erα和erβ表达的影响 | 第51页 |
5.4 讨论 | 第51-53页 |
6 结论 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-60页 |
致谢 | 第60-61页 |
作者简介 | 第61-62页 |
导师简介 | 第62页 |