| 内容提要 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 中英文缩写对照 | 第11-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-22页 |
| 1.1 壳聚糖的研究现状 | 第12-15页 |
| 1.1.1 壳聚糖的分子结构 | 第12-13页 |
| 1.1.2 壳聚糖的生理活性 | 第13页 |
| 1.1.3 壳聚糖的生物相容性 | 第13-14页 |
| 1.1.4 壳聚糖的应用 | 第14-15页 |
| 1.2 血管再狭窄及其发病机制 | 第15-20页 |
| 1.2.1 血管再狭窄的形成及原因 | 第15-16页 |
| 1.2.2 VSMC 与血管再狭窄 | 第16-17页 |
| 1.2.3 细胞因子与血管再狭窄 | 第17-19页 |
| 1.2.4 细胞黏附分子与血管再狭窄 | 第19-20页 |
| 1.3 目前 RS 治疗措施的研究 | 第20-21页 |
| 1.4 LMCTS 防治 RS 的研究意义 | 第21-22页 |
| 第二章 实验内容 | 第22-42页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-24页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第22页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第22-23页 |
| 2.1.3 实验药品 | 第23-24页 |
| 2.1.4 细胞 | 第24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-30页 |
| 2.2.1 分组给药 | 第24页 |
| 2.2.2 建立大鼠血管再狭窄模型 | 第24页 |
| 2.2.3 免疫组织化学染色 | 第24-25页 |
| 2.2.4 VSMCs 的原代培养 | 第25-26页 |
| 2.2.5 CCK8 法检测 VSMCs 的增殖 | 第26-27页 |
| 2.2.6 VSMCs 的黏附率检测 | 第27页 |
| 2.2.7 VSMCs 的 ICAM-1 的水平检测 | 第27-28页 |
| 2.2.8 Western-blot 检测 TNF-α以及 ICAM-1 的表达 | 第28-29页 |
| 2.2.9 统计分析 | 第29-30页 |
| 2.3 实验结果 | 第30-42页 |
| 2.3.1 LMCTS 对大鼠血管组织中 TNF-α的组织水平表达 | 第30-33页 |
| 2.3.2 LMCTS 对大鼠血管组织中 TNF-α的蛋白水平表达 | 第33-34页 |
| 2.3.3 LMCTS 对 TNF-α诱导 VSMCs 增殖的影响 | 第34-36页 |
| 2.3.4 LMCTS 对 TNF-α诱导 VSMCs 与 THP1 细胞的黏附作用 | 第36-38页 |
| 2.3.5 LMCTS 对 TNF-α诱导 VSMCs 的 ICAM-1 表达影响 | 第38-40页 |
| 2.3.6 LMCTS 对 TNF-α诱导 VSMCs 中 ICAM-1 的蛋白表达影响 | 第40-42页 |
| 第三章 讨论 | 第42-44页 |
| 第四章 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-52页 |
| 致谢 | 第52页 |
