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绵羊肺炎支原体P130蛋白主要抗原域原核表达及间接ELISA检测方法的建立

摘要第3-4页
abstract第4-5页
缩略语表第10-11页
1 引言第11-18页
    1.1 支原体概述第11-12页
    1.2 绵羊肺炎支原体的生物学特性第12-13页
        1.2.1 形态特性第12页
        1.2.2 培养特性第12-13页
        1.2.3 遗传特性第13页
    1.3 绵羊支原体性肺炎的流行概况第13-14页
        1.3.1 流行病学第13页
        1.3.2 临床症状第13-14页
        1.3.3 病理变化第14页
    1.4 致病机制第14-15页
        1.4.1 免疫性第15页
    1.5 实验室诊断第15-17页
        1.5.1 分离培养第15页
        1.5.2 血清学鉴定第15-16页
        1.5.3 分子生物学检测第16-17页
    1.6 防治措施第17页
    1.7 本研究的目的及其意义第17-18页
2 绵羊肺炎支原体P130-3的原核表达第18-28页
    2.1 实验材料第18-20页
        2.1.1 菌株及质粒第18页
        2.1.2 仪器设备第18-19页
        2.1.3 主要溶液第19-20页
    2.2 试验方法第20-25页
        2.2.1 引物的设计与合成第20页
        2.2.2 P130-3基因的扩增与克隆第20-21页
        2.2.3 PCR产物胶回收第21页
        2.2.4 P130-3基因原核表达载体的构建第21页
        2.2.5 重组质粒转化第21页
        2.2.6 重组质粒的PCR鉴定第21-22页
        2.2.7 阳性重组质粒的提取第22页
        2.2.8 重组质粒的双酶切鉴定第22页
        2.2.9 重组质粒转化到表达宿主菌第22页
        2.2.10 融合蛋白的表达及最佳IPTG诱导浓度的确定第22-23页
        2.2.11 融合蛋白最佳诱导时间的确定第23页
        2.2.12 重组蛋白的纯化第23页
        2.2.13 重组蛋白的浓缩第23-24页
        2.2.14 重组蛋白的Western blot分析第24-25页
    2.3 结果第25-27页
        2.3.1 P130-3基因的扩增第25页
        2.3.2 重组表达载体的构建及鉴定第25-26页
        2.3.3 融合蛋白诱导表达条件的优化第26-27页
        2.3.4 重组蛋白的反应原性鉴定第27页
    2.4 讨论第27-28页
3 基于P130-3蛋白的绵羊肺炎支原体间接ELISA检测方法的建立第28-40页
    3.1 试验材料第28-29页
        3.1.1 试验血清第28页
        3.1.2 仪器、设备第28页
        3.1.3 主要试剂第28页
        3.1.4 主要溶液第28-29页
    3.2 试验方法第29-31页
        3.2.1 方法、步骤第29页
        3.2.2 间接ELISA试验最佳工作条件的优化第29-30页
        3.2.3 阴阳判定临界值的确定第30页
        3.2.4 特异性试验第30页
        3.2.5 敏感性试验第30-31页
        3.2.6 重复性试验第31页
        3.2.7 临床样品的检测第31页
    3.3 结果第31-38页
        3.3.1 P130-3-ELISA反应最佳工作条件的确定第31-32页
        3.3.2 抗原蛋白最佳包被条件的确定第32-33页
        3.3.3 一抗最佳孵育条件的确定第33页
        3.3.4 最佳封闭液的选择第33-34页
        3.3.5 最佳酶标二抗工作浓度的确定第34页
        3.3.6 P130-3-ELISA判定标准的确定第34页
        3.3.7 特异性实验第34-35页
        3.3.8 敏感性实验第35页
        3.3.9 重复性实验第35-36页
        3.3.10 临床样品的检查第36-38页
    3.4 讨论第38-39页
    3.5 小结第39-40页
4 全文总结第40-41页
致谢第41-42页
参考文献第42-46页
作者简介第46页

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