| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略语 | 第11-14页 |
| 1 前言 | 第14-15页 |
| 2 材料与方法 | 第15-31页 |
| 2.1 实验材料与试剂 | 第15-18页 |
| 2.1.1 实验细胞和动物 | 第15页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第15-16页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第16-17页 |
| 2.1.4 相关试剂配置 | 第17-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-31页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第18-19页 |
| 2.2.2 细胞转染及稳定转染细胞株的筛选 | 第19页 |
| 2.2.3 QRT-PCR分析 | 第19-21页 |
| 2.2.4 westernblot分析 | 第21-24页 |
| 2.2.5 细胞内ADR含量测定 | 第24页 |
| 2.2.6 细胞生存分析(CCK-8assay) | 第24-25页 |
| 2.2.7 Chipassay | 第25-26页 |
| 2.2.8 荧光素酶报告基因分析 | 第26页 |
| 2.2.9 裸鼠移植瘤模型建立 | 第26-27页 |
| 2.2.10 组织化学 | 第27-28页 |
| 2.2.11 液相色谱—串联质谱法 | 第28-30页 |
| 2.2.12 统计分析 | 第30-31页 |
| 3 结果 | 第31-43页 |
| 3.1 具有OCSCs样特性的卵巢癌球囊细胞对化疗药耐药且高表达干性标志物-耐药蛋白BCRP | 第31-32页 |
| 3.1.1 OVCAR-3S和CAOV-3S对化疗药耐药且对ADR的抗药性最强 | 第31-32页 |
| 3.1.2 OVCAR-3S和CAOV-3S高表达干性标志物—耐药蛋白BCRP | 第32页 |
| 3.2 HIF-2α通过影响OCSCsBCRP的表达及转运功能介导对ADR耐药 | 第32-37页 |
| 3.2.1 HIF-2α与BCRP分别在mRNA及蛋白水平呈现正相关 | 第32-33页 |
| 3.2.2 HIF-2α介导OCSCs耐药与调控BCRP的表达及功能有关 | 第33-37页 |
| 3.3 HIF-2α对BCRP的直接转录激活作用 | 第37-39页 |
| 3.4 沉默HIF-2α表达增强了OCSCs荷瘤鼠移植瘤对ADR的敏感性 | 第39-43页 |
| 4 讨论 | 第43-45页 |
| 5 结论 | 第45-46页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 综述 | 第50-59页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 个人简历 | 第61页 |
