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中华真地鳖(Eupolyphaga sinensis)抗肿瘤蛋白分离纯化及其体外抗转移活性研究

中文摘要第16-19页
ABSTRACT第19-22页
符号说明第23-25页
第一章 前言第25-48页
    1 抗肿瘤药物研发战略第25-28页
        1.1 新的细胞毒类药物第25-27页
        1.2 新靶点抗肿瘤药物研究第27-28页
    2 整合素与肿瘤转移第28-37页
        2.1 整合素结构第28-30页
        2.2 整合素在肿瘤转移过程中的作用第30-37页
            2.2.1 整合素对细胞存活的作用第32页
            2.2.2 整合素对细胞迁移的影响第32-33页
            2.2.3 整合素调节血管生成第33-34页
            2.2.4 整合素对肿瘤入侵与转移的影响第34页
            2.2.5 ECM—整合素相互作用成为癌症治疗的重要靶点第34-37页
                2.2.5.1 整合素抑制剂第34-36页
                2.2.5.2 基质金属蛋白酶(MMP)抑制剂第36-37页
    3 动物毒素的抗肿瘤作用第37-40页
        3.1 斑蝥素(cantharidin,CA)第37页
        3.2 多肽、蛋白质或酶类第37-40页
            3.2.1 蛇毒素去整合素(Disintegrins)第38页
            3.2.2 蝎毒素Chlorotoxin(Cltx)第38-39页
            3.2.3 蜂毒素(Melittin)第39页
            3.2.4 海鞘多肽Didemnin B第39-40页
            3.2.5 海兔多肽Dolastatin第40页
            3.2.6 海兔蛋白Cyplasin第40页
    4 中华真地鳖化学成分及药理作用研究进展第40-46页
        4.1 中华真地鳖活性成分第41-43页
            4.1.1 蛋白质(酶)和氨基酸第41-42页
                4.1.1.1 氨基酸第41-42页
                4.1.1.2 纤溶活性成分第42页
                4.1.1.3 抗肿瘤活性蛋白成分第42页
            4.1.2 脂肪酸第42-43页
            4.1.3 生物碱第43页
            4.1.4 脂溶性维生素和无机元素第43页
            4.1.5 高级醇及其衍生物第43页
            4.1.6 其他成分第43页
        4.2 中华真地鳖的药理作用第43-46页
            4.2.1 对心血管系统的影响第44-45页
                4.2.1.1 抗凝血和抗血栓作用第44页
                4.2.1.2 调节血脂、抗氧自由基及保护血管内皮细胞的作用第44页
                4.2.1.3 对血液流变性作用第44-45页
                4.2.1.4 抗缺血缺氧第45页
            4.2.2 抑制血管生成及抗肿瘤活性第45页
            4.2.3 抗突变作用第45-46页
            4.2.4 治疗骨折创伤作用第46页
            4.2.5 对免疫系统的影响及抗氧化作用第46页
            4.2.6 其他作用第46页
    5 本课题研究的目的和意义第46-48页
第二章 中华真地鳖抗肿瘤蛋白分离纯化及鉴定第48-72页
    1 材料第48-51页
        1.1 实验材料及细胞第48-49页
        1.2 主要仪器设备及耗材第49-50页
        1.3 酶及主要试剂第50-51页
    2 实验方法第51-60页
        2.1 中华真地鳖抗肿瘤蛋白的分离纯化第51-55页
            2.1.1 蛋白粗提物的制备第51页
            2.1.2 抗肿瘤蛋白的纯化第51-54页
                2.1.2.1 CM-Sepharose FF弱阳离子交换色谱第51-52页
                2.1.2.2 DEAE-Sepharose FF弱阴离子交换色谱第52-53页
                2.1.2.3 Q-Sepharose HP强阴离子交换色谱第53页
                2.1.2.4 Butyl Sepharose HP疏水相互作用色谱第53-54页
                2.1.2.5 Superdex 75凝胶过滤色谱第54页
            2.1.3 中华真地鳖抗肿瘤蛋白提取纯化流程第54-55页
        2.2 BCA法测定蛋白浓度第55-56页
        2.3 细胞培养第56-57页
        2.4 MTT法检测蛋白组分体外抗肿瘤活性第57-58页
        2.5 中华真地鳖抗肿瘤蛋白鉴定第58-60页
            2.5.1 SDS-PAGE鉴定蛋白纯度和表观分子量第58-60页
            2.5.2 质谱法测定分子质量第60页
        2.6 统计学处理第60页
    3 结果第60-67页
        3.1 中华真地鳖抗肿瘤蛋白的分离纯化第60-65页
            3.1.1 CM-Sepharose FF阳离子交换色谱结果第60-61页
            3.1.2 DEAE-Sepharose FF阴离子交换色谱结果第61-62页
            3.1.3 Q-Sepharose HP阴离子交换色谱结果第62-63页
            3.1.4 Butyl SepharoseHP疏水色谱结果第63-64页
            3.1.5 Superdex 75凝胶过滤色谱结果第64-65页
        3.2 中华真地鳖抗肿瘤蛋白鉴定第65-66页
            3.2.1 SDS-PAGE结果第65页
            3.2.2 MALDI-TOF-MS结果第65-66页
        3.3 中华真地鳖抗肿瘤蛋白得率第66页
        3.4 分离纯化过程中各活性组分体外抗肿瘤活性检测第66-67页
    4 讨论第67-71页
    5 本章小结第71-72页
第三章 中华真地鳖抗肿瘤蛋白EPS72体外抗肿瘤方式研究第72-96页
    1 材料第72-74页
        1.1 细胞系第72页
        1.2 主要仪器设备及耗材第72-73页
        1.3 酶及主要试剂第73-74页
        1.4 主要试剂的配制第74页
    2 实验方法第74-81页
        2.1 细胞培养第74页
        2.2 MTT存活分析第74-75页
            2.2.1 EPS72抗瘤谱分析第75页
            2.2.2 EPS72对A549细胞增殖的影响第75页
        2.3 细胞形态学观察第75页
        2.4 台盼蓝染色计数第75-76页
        2.5 JC-1检测线粒体膜电位(△Ψm)第76-77页
        2.6 AO/EB双荧光染色第77-78页
        2.7 细胞—基质粘附实验第78-79页
        2.8 细胞伸展实验第79-80页
        2.9 细胞迁移实验第80页
        2.10 细胞侵袭实验第80-81页
        2.11 统计学处理第81页
    3 结果第81-93页
        3.1 EPS72对体外培养肿瘤细胞及正常细胞的胞毒作用第81-83页
        3.2 EPS72对A549细胞增殖与存活的影响第83-84页
        3.3 EPS72对A549细胞形态学的影响第84-85页
        3.4 脱粘附细胞存活状态检测第85-86页
            3.4.1 台盼蓝染色结果第85-86页
            3.4.2 撤药重培养结果第86页
        3.5 EPS72进一步诱导A549细胞凋亡第86-89页
            3.5.1 JC-1检测线粒体膜电位(△Ψm)结果第86-88页
            3.5.2 AO/EB荧光染色结果第88-89页
        3.6 EPS72对A549细胞粘附的影响第89-90页
        3.7 EPS72对A549细胞伸展能力的影响第90-92页
        3.8 EPS72对肿瘤细胞迁移能力的影响第92页
        3.9 EPS72对肿瘤细胞侵袭能力的影响第92-93页
    4 讨论第93-95页
    5 本章小结第95-96页
第四章 中华真地鳖抗肿瘤蛋白EPS72体外抗肿瘤作用分子机制的初步研究第96-110页
    1 材料第96-98页
        1.1 细胞系第96页
        1.2 主要仪器设备及耗材第96-97页
        1.3 酶及主要试剂第97-98页
    2 实验方法第98-104页
        2.1 微丝F-actin免疫荧光染色第98-99页
        2.2 流式细胞仪检测β1-整合素的表面表达第99页
        2.3 Western blotting分析β1-整合素和ILK细胞内表达情况第99-104页
        2.4 统计学分析第104页
    3 结果第104-107页
        3.1 EPS72诱导F-actin解聚第104-105页
        3.2 EPS72影响β1-整合素和ILK表达第105-107页
    4 讨论第107-109页
    5 本章小结第109-110页
总结与展望第110-112页
    1 本研究的主要结论第110页
    2 展望第110-112页
参考文献第112-128页
Article第128-136页
致谢第136-137页
博士期间发表的论文第137-138页
学位论文评阅及答辩情况表第138页

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