| 致谢 | 第7-11页 |
| 摘要 | 第11-12页 |
| Abstract | 第12页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-25页 |
| 第一节 水稻白叶枯病与细菌性条斑病研究进展 | 第13-17页 |
| 1.1.1 水稻白叶枯病与细菌性条斑病危害情况 | 第13页 |
| 1.1.2 水稻白叶枯病症状 | 第13-14页 |
| 1.1.3 细条病症状 | 第14-15页 |
| 1.1.4 白叶枯病与细条病的防治研究现状 | 第15-17页 |
| 1.1.4.1 加强检疫措施 | 第15页 |
| 1.1.4.2 选育抗病品种 | 第15页 |
| 1.1.4.3 病害预测预报 | 第15-16页 |
| 1.1.4.4 化学防治 | 第16页 |
| 1.1.4.5 生物防治 | 第16-17页 |
| 第二节 壳聚糖抗菌活性及机制研究进展 | 第17-23页 |
| 1.2.1 壳聚糖抗菌活性研究进展 | 第17-18页 |
| 1.2.2 壳聚糖抗菌活性影响因素 | 第18-19页 |
| 1.2.2.1 菌的种类 | 第18页 |
| 1.2.2.2 分子量和脱乙酰度 | 第18页 |
| 1.2.2.3 壳聚糖溶液的浓度 | 第18-19页 |
| 1.2.2.4 溶剂酸的种类和PH值 | 第19页 |
| 1.2.3 壳聚糖的抗菌活性机理研究进展 | 第19-21页 |
| 1.2.3.1 壳聚糖杀菌或者抑菌 | 第19-20页 |
| 1.2.3.2 壳聚糖对细胞膜的破坏或干扰作用 | 第20-21页 |
| 1.2.3.3 壳聚糖和核酸的相互作用 | 第21页 |
| 1.2.3.4 壳聚糖阻断营养物质的交换运输 | 第21页 |
| 1.2.4 壳聚糖/纳米二氧化钛复合材料研究进展 | 第21-23页 |
| 1.2.4.1 纳米二氧化钛复合材料研究进展 | 第22-23页 |
| 1.2.4.2 壳聚糖/纳米二氧化钛复合材料展望 | 第23页 |
| 第三节 本论文的研究目的和意义 | 第23-25页 |
| 第二章 壳聚糖对水稻白叶枯和细菌性条斑病防治效果和机制研究 | 第25-44页 |
| 2.1 材料和方法 | 第25-30页 |
| 2.1.1 供试菌株 | 第25页 |
| 2.1.2 培养基 | 第25页 |
| 2.1.3 Xoc和Xoo的活化与培养 | 第25页 |
| 2.1.4 壳聚糖母液的配制 | 第25页 |
| 2.1.5 细菌悬浮液制备 | 第25-26页 |
| 2.1.6 活菌计数方法 | 第26页 |
| 2.1.7 壳聚糖对Xoc和Xoo的抑制活性 | 第26页 |
| 2.1.7.1 壳聚糖浓度对抑菌活性的影响 | 第26页 |
| 2.1.7.2 时间对壳聚糖抑菌活性的影响 | 第26页 |
| 2.1.8 壳聚糖的抗菌机制(离体) | 第26-28页 |
| 2.1.8.1 细胞膜完整性 | 第26-27页 |
| 2.1.8.2 扫描电镜(SEM) | 第27页 |
| 2.1.8.3 透射电镜(TEM) | 第27-28页 |
| 2.1.8.4 壳聚糖对生物膜形成的影响 | 第28页 |
| 2.1.9 壳聚糖的抗菌活性(活体) | 第28-30页 |
| 2.1.9.1 壳聚糖对水稻发病率和病斑长度的影响 | 第28-29页 |
| 2.1.9.2 壳聚糖诱导水稻抗病性 | 第29-30页 |
| 2.1.9.2.1 取样 | 第29页 |
| 2.1.9.2.2 酶液提取 | 第29页 |
| 2.1.9.2.3 酶活性测定 | 第29-30页 |
| 2.2 结果与分析 | 第30-41页 |
| 2.2.1 壳聚糖在离体条件下的抗菌活性 | 第30-32页 |
| 2.2.1.1 不同壳聚糖浓度和脱乙酰度对水稻白叶枯和细菌性条斑病菌抑菌活性影响 | 第30-31页 |
| 2.2.1.2 不同时间对两种壳聚糖抑菌活性的影响 | 第31-32页 |
| 2.2.2 在离体条件下壳聚糖的抗菌机制 | 第32-37页 |
| 2.2.2.1 壳聚糖对膜完整性的影响 | 第32-34页 |
| 2.2.2.2 扫描电镜观察 | 第34-35页 |
| 2.2.2.3 透射电镜观察 | 第35-36页 |
| 2.2.2.4 壳聚糖对生物膜形成的影响 | 第36-37页 |
| 2.2.3 在植物体上壳聚糖的防病机制 | 第37-41页 |
| 2.2.3.1 在温室壳聚糖防治水稻白叶枯和细条病的效果研究 | 第37-39页 |
| 2.2.3.2 壳聚糖对酶活性的影响 | 第39-41页 |
| 2.3 讨论 | 第41-44页 |
| 第三章 壳聚糖/纳米TIO_2复合材料的抗菌活性研究 | 第44-55页 |
| 3.1 材料和方法 | 第44-47页 |
| 3.1.1 供试菌株 | 第44页 |
| 3.1.2 培养基 | 第44页 |
| 3.1.3 Xoc和Xoo的活化与培养 | 第44页 |
| 3.1.4 壳聚糖母液的配制 | 第44页 |
| 3.1.5 壳聚糖/纳米二氧化钛复合材料配制 | 第44-45页 |
| 3.1.6 壳聚糖/纳米二氧化钛复合材料红外光谱特性 | 第45页 |
| 3.1.7 胞外聚合物(EPS)提取及扫描电镜 | 第45-46页 |
| 3.1.7.1 阳离子交换树脂的前处理 | 第45-46页 |
| 3.1.7.2 EPS提取 | 第46页 |
| 3.1.7.3 EPS提取前后细胞扫描电镜观察 | 第46页 |
| 3.1.8 壳聚糖/纳米二氧化钛对EPS的影响 | 第46-47页 |
| 3.1.9 EPS红外光谱测定 | 第47页 |
| 3.2 结果与分析 | 第47-53页 |
| 3.2.1 壳聚糖/纳米二氧化钛复合材料红外光谱分析 | 第47-48页 |
| 3.2.2 壳聚糖/纳米二氧化钛复合材料抗菌活性 | 第48-51页 |
| 3.2.2.1 无光条件下的抗菌活性 | 第48-49页 |
| 3.2.2.2 太阳光照条件下的抗菌活性 | 第49-50页 |
| 3.2.2.3 EPS提取前后Xoo对壳聚糖及壳聚糖/纳米二氧化钛复合材料敏感性 | 第50-51页 |
| 3.2.3 EPS提取前后细胞扫描电镜观察 | 第51-52页 |
| 3.2.4 壳聚糖/纳米二氧化钛对EPS的影响 | 第52-53页 |
| 3.3 讨论 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 作者简历 | 第61-63页 |
| 附录 | 第63-64页 |
