摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第1章 绪论 | 第14-43页 |
1.猪血资源概况 | 第14-22页 |
1.1 猪血的营养价值 | 第14-15页 |
1.1.1 蛋白质含量及氨基酸组成 | 第14-15页 |
1.1.2 猪血中的其它营养成分 | 第15页 |
1.2 猪血的药用价值 | 第15页 |
1.3 目前猪血的主要加工工艺 | 第15-18页 |
1.3.1 蒸煮法 | 第16页 |
1.3.2 喷雾干燥法 | 第16页 |
1.3.3 膨化处理法 | 第16-17页 |
1.3.4 水解法 | 第17-18页 |
1.4 猪血的开发利用领域 | 第18-22页 |
1.4.1 国内猪血的开发利用 | 第18-21页 |
1.4.2 国外猪血的开发利用 | 第21-22页 |
2.蛋白质的酶解技术概况 | 第22-28页 |
2.1 蛋白质酶解物的开发现状 | 第22-23页 |
2.2 蛋白质酶解技术特点 | 第23页 |
2.3 蛋白质酶解产物特点 | 第23-25页 |
2.4 蛋白质的控制酶解 | 第25-27页 |
2.4.1 原料的选择 | 第25-26页 |
2.4.2 酶的选择 | 第26-27页 |
2.4.3 水解过程及水解度的控制 | 第27页 |
2.5 酶解过程的模拟及优化技术 | 第27-28页 |
3.生物活性肽的研究现状 | 第28-30页 |
3.1 生物活性肽的吸收特点 | 第28-29页 |
3.2 生物活性肽的来源 | 第29页 |
3.3 生物活性肽的研究现状 | 第29-30页 |
4.本研究的立题依据和研究内容 | 第30-33页 |
4.1 立题依据 | 第30-31页 |
4.2 研究内容 | 第31-33页 |
参考文献 | 第33-43页 |
第2章 猪血蛋白的酶解特性研究 | 第43-86页 |
1.材料与方法 | 第43-47页 |
1.1 材料 | 第43-44页 |
1.1.1 试验材料 | 第43页 |
1.1.2 主要仪器和试剂 | 第43-44页 |
1.2 试验方法 | 第44-47页 |
1.2.1 猪血蛋白的酶解反应 | 第44-45页 |
1.2.2 猪血蛋白酶解物的感官指标检测 | 第45-46页 |
1.2.3 猪血蛋白酶解物的理化性质检测 | 第46页 |
1.2.4 猪血蛋白酶解物的功能特性检测 | 第46-47页 |
2.结果与分析 | 第47-73页 |
2.1 猪血蛋白酶解条件的试验结果 | 第47-63页 |
2.1.1 胰蛋白复合酶活性的测定 | 第47-48页 |
2.1.2 单因素试验对水解度的影响 | 第48-54页 |
2.1.3 响应曲面法分析 | 第54-63页 |
2.1.4 蛋白质回收率的测定结果 | 第63页 |
2.2 猪血蛋白酶解物的感官检测结果 | 第63-64页 |
2.3 猪血蛋白酶解物的理化性质检测结果 | 第64-70页 |
2.3.1 猪血蛋白酶解物的基本营养成分 | 第64页 |
2.3.2 猪血和猪血蛋白酶解物中游离氨基酸含量的比较分析 | 第64-66页 |
2.3.3 猪血和猪血蛋白酶解物中氨基酸的组成 | 第66-67页 |
2.3.4 分子量的分布 | 第67-69页 |
2.3.5 紫外光谱扫描 | 第69-70页 |
2.3.6 红外光谱扫描 | 第70页 |
2.4 猪血蛋白酶解物功能特性的检测结果 | 第70-73页 |
2.4.1 溶解性 | 第70-71页 |
2.4.2 起泡性 | 第71-72页 |
2.4.3 乳化性 | 第72-73页 |
3.讨论 | 第73-80页 |
3.1 关于猪血蛋白的酶解反应 | 第73-78页 |
3.1.1 关于猪血原料的前处理 | 第74-75页 |
3.1.2 关于酶的选择及酶解条件的优化 | 第75-78页 |
3.2 关于猪血蛋白酶解物的理化性质 | 第78页 |
3.3 关于猪血蛋白酶解物的功能性质 | 第78-80页 |
4.结论 | 第80-82页 |
参考文献 | 第82-86页 |
第3章 猪血蛋白酶解物的安全性毒理学评价 | 第86-104页 |
1.材料与方法 | 第86-88页 |
1.1 实验动物 | 第86页 |
1.2 受试物 | 第86页 |
1.3 主要仪器设备和试剂 | 第86-87页 |
1.4 方法 | 第87-88页 |
1.4.1 急性毒性试验 | 第87页 |
1.4.2 蓄积性毒性试验 | 第87页 |
1.4.3 小鼠骨髓嗜多染红细胞微核试验 | 第87页 |
1.4.4 小鼠精子畸变试验 | 第87-88页 |
1.4.5 亚急性毒性试验 | 第88页 |
1.5 数据统计 | 第88页 |
2.结果与分析 | 第88-97页 |
2.1 急性毒性试验结果 | 第88-89页 |
2.1.1 小鼠经口急性毒性试验结果 | 第88页 |
2.1.2 大鼠经口急性毒性试验结果 | 第88-89页 |
2.2 蓄积性毒性试验结果 | 第89页 |
2.3 小鼠骨髓嗜多染红细胞微核试验结果 | 第89-90页 |
2.4 小鼠精子畸变试验 | 第90页 |
2.5 大鼠亚急性毒性试验结果 | 第90-97页 |
2.5.1 大鼠生长状况、体重、摄食量及食物利用率 | 第90-92页 |
2.5.2 病理剖检变化 | 第92页 |
2.5.3 组织病理学变化 | 第92-96页 |
2.5.4 脏器系数检测 | 第96页 |
2.5.5 血常规检测 | 第96页 |
2.5.6 血液生化指标检测 | 第96-97页 |
3.讨论 | 第97-100页 |
3.1 关于急性毒性试验 | 第97-98页 |
3.2 关于蓄积性毒性试验 | 第98页 |
3.3 关于骨髓嗜多染红细胞微核试验 | 第98页 |
3.4 关于精子畸变试验 | 第98-99页 |
3.5 关于亚急性毒性试验 | 第99-100页 |
3.5.1 猪血蛋白酶解物对大鼠生长的影响 | 第99页 |
3.5.2 猪血蛋白酶解物对大鼠内脏器官的影响 | 第99-100页 |
3.5.3 猪血蛋白酶解物对大鼠血常规指标的影响 | 第100页 |
3.5.4 猪血蛋白酶解物对大鼠血液生化指标的影响 | 第100页 |
4.结论 | 第100-102页 |
参考文献 | 第102-104页 |
第4章 猪血蛋白酶解物抗氧化功能研究 | 第104-124页 |
1.材料与方法 | 第104-107页 |
1.1 试验动物 | 第104页 |
1.2 受试物 | 第104页 |
1.3 主要仪器和试剂 | 第104-105页 |
1.4 方法 | 第105-107页 |
1.4.1 猪血蛋白酶解物的分离 | 第105页 |
1.4.2 体外抗氧化试验 | 第105-106页 |
1.4.3 体内抗氧化试验 | 第106-107页 |
2.结果与分析 | 第107-115页 |
2.1 猪血蛋白酶解物的分离结果 | 第107-109页 |
2.1.1 葡聚糖凝胶Sephadex G-15的分离结果 | 第107页 |
2.1.2 Sephadex G-15凝胶层析所得组分清除DPPH·能力比较 | 第107-108页 |
2.1.3 HPLC的分离结果 | 第108-109页 |
2.2 体外抗氧化试验结果 | 第109-113页 |
2.2.1 猪血蛋白酶解物的还原能力 | 第109-110页 |
2.2.2 猪血蛋白酶解物对O_2~-·的清除作用 | 第110-111页 |
2.2.3 猪血蛋白酶解物对.·OH的清除作用 | 第111-112页 |
2.2.4 猪血蛋白酶解物对DPPH·的清除作用 | 第112-113页 |
2.3 体内抗氧化试验结果 | 第113-115页 |
2.3.1 体重的测定 | 第113-114页 |
2.3.2 血中SOD、GSH-P_x的测定 | 第114页 |
2.3.3 肝组织中SOD、GSH-P_x、MDA活性的测定 | 第114-115页 |
3.讨论 | 第115-119页 |
3.1 关于猪血蛋白酶解物的体外抗氧化效果 | 第115-117页 |
3.1.1 关于猪血蛋白酶解物的还原能力 | 第115页 |
3.1.2 关于猪血蛋白酶解物清除O_2~-·的能力 | 第115-116页 |
3.1.3 关于猪血蛋白酶解物清除·OH的能力 | 第116页 |
3.1.4 关于猪血蛋白酶解物清除DPPH·的能力 | 第116-117页 |
3.2 关于猪血蛋白酶解物的体内抗氧化效果 | 第117-118页 |
3.2.1 关于过氧化损伤动物模型的建立 | 第117页 |
3.2.2 关于猪血蛋白酶解物对肝组织过氧化损伤的保护作用 | 第117-118页 |
3.3 猪血蛋白酶解物抗氧化机理的探讨 | 第118-119页 |
4.结论 | 第119-121页 |
参考文献 | 第121-124页 |
第5章 猪血蛋白酶解物辅助调节血脂作用研究 | 第124-146页 |
1.材料与方法 | 第124-130页 |
1.1 试验动物 | 第124页 |
1.2 受试物 | 第124页 |
1.3 主要仪器和试剂 | 第124-125页 |
1.4 方法 | 第125-130页 |
1.4.1 动物分组和给药 | 第125页 |
1.4.2 检测指标 | 第125-130页 |
1.4.3 数据统计 | 第130页 |
2.结果与分析 | 第130-138页 |
2.1 大鼠生长状况和体重变化 | 第130页 |
2.2 猪血蛋白酶解物对大鼠血脂的影响 | 第130-131页 |
2.3 猪血蛋白酶解物对大鼠肝脂的影响 | 第131页 |
2.4 肝脏组织的剖检及组织病理学观察 | 第131-133页 |
2.5 猪血蛋白酶解物对大鼠肝脏肝脂酶和脂蛋白脂酶的影响 | 第133页 |
2.6 猪血蛋白酶解物对大鼠肝脏mRNA表达的影响 | 第133-138页 |
2.6.1 总RNA提取的效果 | 第134页 |
2.6.2 猪血蛋白酶解物对LPL mRNA基因相对表达量的影响 | 第134-138页 |
3.讨论 | 第138-142页 |
3.1 关于试验期间大鼠体重的变化 | 第139页 |
3.2 关于猪血蛋白酶解物对大鼠血脂的影响 | 第139-140页 |
3.2.1 关于高脂模型的建立 | 第139页 |
3.2.2 关于大鼠血脂的变化 | 第139-140页 |
3.3 关于猪血蛋白酶解物对大鼠肝脂的影响 | 第140页 |
3.4 关于猪血蛋白酶解物对肝脏肝脂酶和脂蛋白脂酶的影响 | 第140-141页 |
3.5 关于猪血蛋白酶解物对大鼠肝脏mRNA表达的影响 | 第141-142页 |
4.结论 | 第142-143页 |
参考文献 | 第143-146页 |
第6章 猪血蛋白酶解物缓解疲劳作用研究 | 第146-159页 |
1.材料与方法 | 第146-148页 |
1.1 试验动物 | 第146页 |
1.2 受试物 | 第146页 |
1.3 主要仪器和试剂 | 第146-147页 |
1.4 方法 | 第147-148页 |
1.4.1 动物分组和剂量设计 | 第147页 |
1.4.2 负重游泳试验 | 第147页 |
1.4.3 常压耐缺氧试验 | 第147页 |
1.4.4 红细胞数、血红蛋白含量、肝糖原、肌糖原的检测 | 第147-148页 |
1.4.5 尿素氮检测 | 第148页 |
1.4.6 血乳酸检测 | 第148页 |
1.4.7 血清和组织SOD、GSH-P_x、MOD、NO、NOS、LDH、CK的检测及组织切片观察 | 第148页 |
1.5 数据统计 | 第148页 |
2.结果与分析 | 第148-151页 |
2.1 负重游泳时间和常压耐缺氧时间的测定 | 第148-149页 |
2.2 红细胞数、血红蛋白的测定 | 第149页 |
2.3 肝糖原、肌糖原、血清尿素氮的测定 | 第149页 |
2.4 血乳酸的测定 | 第149-150页 |
2.5 血清和肝脏SOD、GSH-P_x、MDA的测定 | 第150页 |
2.6 脑组织NO、NOS及血清LDH、CK的测定 | 第150-151页 |
2.7 骨骼肌和心肌的组织切片观察 | 第151页 |
3.讨论 | 第151-155页 |
3.1 关于猪血蛋白酶解物对小鼠运动耐力的影响 | 第151-152页 |
3.2 关于猪血蛋白酶解物对小鼠耐缺氧能力的影响 | 第152页 |
3.3 关于猪血蛋白酶解物对小鼠RBC、Hb的影响 | 第152页 |
3.4 关于猪血蛋白酶解物对小鼠能源物资储备的影响 | 第152-153页 |
3.5 关于猪血蛋白酶解物对小鼠代谢产物的影响 | 第153页 |
3.6 关于猪血蛋白酶解物对小鼠抗氧化能力的影响 | 第153-154页 |
3.7 关于猪血蛋白酶解物对小鼠脑组织NO含量及NOS活性的影响 | 第154页 |
3.8 关于猪血蛋白酶解物对小鼠长时间力竭运动后肌肉组织的影响 | 第154-155页 |
4.结论 | 第155-156页 |
参考文献 | 第156-159页 |
第7章 结论与展望 | 第159-162页 |
1.结论 | 第159-160页 |
2.展望 | 第160-162页 |
致谢 | 第162-163页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第163页 |