| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 前言 | 第12-26页 |
| 1 电致化学发光（ECL） | 第12-18页 |
| 1.1 电致化学发光的发展历程 | 第12-13页 |
| 1.2 MPI-E型电致化学发光的实验装置 | 第13页 |
| 1.3 电致化学发光的原理 | 第13-14页 |
| 1.4 电致化学发光的方法特点 | 第14页 |
| 1.5 电致化学发光体系 | 第14-17页 |
| 1.6 电致化学发光的应用 | 第17-18页 |
| 1.6.1 电致化学发光在分析方面的应用 | 第17页 |
| 1.6.2 电致化学发光在免疫的应用 | 第17-18页 |
| 1.6.3 电致化学发光成像法的应用 | 第18页 |
| 2 传感器的概述 | 第18-21页 |
| 2.1 传感器的定义 | 第18页 |
| 2.2 传感器的发展及应用 | 第18-19页 |
| 2.3 生物传感器及其分类 | 第19-20页 |
| 2.4 生物传感器的特点 | 第20页 |
| 2.5 生物传感器的展望 | 第20-21页 |
| 3 复合纳米材料 | 第21-24页 |
| 3.1 复合纳米材料的概述 | 第21-22页 |
| 3.2 复合纳米材料的分类 | 第22页 |
| 3.3 复合纳米材料的特性 | 第22-23页 |
| 3.3.1 复合纳米材料的催化性能 | 第22页 |
| 3.3.2 复合纳米材料的高强度、高韧性 | 第22-23页 |
| 3.3.3 复合纳米材料的光学性质 | 第23页 |
| 3.3.4 复合纳米材料智敏性 | 第23页 |
| 3.4 复合纳米材料在生物传感器方面的应用 | 第23-24页 |
| 4 本课题的研究内容和意义 | 第24-26页 |
| 4.1 本课题的研究内容 | 第24页 |
| 4.2 本课题的研究的目的和意义 | 第24-26页 |
| 第二章 原位合成的AgNCs作为多功能ECL和电化学信号探针高灵敏检测凝血酶的研究 | 第26-42页 |
| 1 前言 | 第26-27页 |
| 2 实验部分 | 第27-30页 |
| 2.1 试剂 | 第27-28页 |
| 2.2 实验装置 | 第28页 |
| 2.3 实验步骤 | 第28-30页 |
| 2.3.1 金纳米颗粒的制备 | 第28页 |
| 2.3.2 DNA酶循环剪切过程 | 第28-29页 |
| 2.3.3 生物传感器的制备 | 第29-30页 |
| 3 结果与讨论 | 第30-41页 |
| 3.1 材料表征图 | 第30-31页 |
| 3.2 生物传感器的电化学特征 | 第31-32页 |
| 3.3 基于原位合成的AgNCs信号探针和双重循环放大技术检测凝血酶的原理 | 第32-33页 |
| 3.4 ECL生物传感研究 | 第33-37页 |
| 3.4.1 原位合成AgNCs的电致化学发光（ECL） | 第33-34页 |
| 3.4.2 基于AgNCs的ECL生物传感器检测凝血酶的可行性 | 第34页 |
| 3.4.3 ECL生物传感器检测目标凝血酶的优化条件 | 第34-35页 |
| 3.4.4 ECL生物传感器检测目标凝血酶 | 第35-36页 |
| 3.4.5 ECL生物传感器检测凝血酶的选择性研究 | 第36-37页 |
| 3.5 电化学生物传感器检测凝血酶 | 第37-40页 |
| 3.5.1 电化学生物传感器检测凝血酶的可行性研究 | 第37-38页 |
| 3.5.2 电化学生物传感器检测目标凝血酶的最优化条件研究 | 第38-39页 |
| 3.5.3 电化学生物传感器检测凝血酶 | 第39-40页 |
| 3.5.4 真实样品中凝血酶的分析 | 第40页 |
| 3.6 该ECL、电化学传感器与其它凝血酶检测方法的比较 | 第40-41页 |
| 4 结论 | 第41-42页 |
| 第三章 基于Ru@SiO_2纳米复合材料和循环放大技术电致化学发光检测CEA的研究 | 第42-57页 |
| 1 前言 | 第42-43页 |
| 2 实验部分 | 第43-46页 |
| 2.1 试剂 | 第43页 |
| 2.2 实验装置 | 第43-44页 |
| 2.3 实验步骤 | 第44-46页 |
| 2.3.1 金纳米颗粒的制备 | 第44页 |
| 2.3.2 MBs@Au的制备 | 第44页 |
| 2.3.3 制备羧基功能化的Ru@Si O2纳米复合材料 | 第44-45页 |
| 2.3.4 制备Ru@Si O2-cDNA探针 | 第45页 |
| 2.3.5 Ru@SiO_2-cDNA-Au@MBs | 第45页 |
| 2.3.6 链替代扩增反应 | 第45页 |
| 2.3.7 电致化学发光（ECL）检测目标CEA | 第45-46页 |
| 3 结果与讨论 | 第46-56页 |
| 3.1 材料表征图 | 第46-48页 |
| 3.1.1 Ru@Si O2纳米复合材料的表征 | 第46-47页 |
| 3.1.2 MBs@Au的结构表征 | 第47-48页 |
| 3.2 Ru@Si O2纳米复合材料的电致化学发光（ECL） | 第48-49页 |
| 3.3 基于Ru@Si O2纳米复合材料的电致化学发光检测CEA的可行性研究 | 第49页 |
| 3.4 基于Ru@SiO_2纳米复合材料和循环放大技术的ECL生物传感器检测CEA的机理 | 第49-51页 |
| 3.5 基于目标循环放大技术的ECL传感器检测CEA的PAGE分析 | 第51-52页 |
| 3.6 ECL传感器不同修饰阶段的电化学表征 | 第52-53页 |
| 3.7 实验条件的优化 | 第53-54页 |
| 3.8 基于Ru@Si O2纳米粒子的电致化学发光生物传感器检测目标CEA | 第54-55页 |
| 3.9 ECL生物传感器的选择性研究 | 第55-56页 |
| 4 结论 | 第56-57页 |
| 第四章 基于信号放大的树枝状量子点探针和酶切循环放大技术电致化学发光检测Hg~(2+)的分析研究 | 第57-72页 |
| 1 前言 | 第57-58页 |
| 2 实验部分 | 第58-61页 |
| 2.1 试剂 | 第58页 |
| 2.2 实验装置 | 第58-59页 |
| 2.3 实验步骤 | 第59-61页 |
| 2.3.1 CNTs-COOH/PDDA/AuNPs的制备 | 第59-60页 |
| 2.3.2 羧基功能化的CdSe@ZnS量子点的制备 | 第60页 |
| 2.3.3 CdSe@ZnS量子点ECL信号探针的制备 | 第60页 |
| 2.3.4 目标Hg~(2+)引发的循环剪切过程 | 第60页 |
| 2.3.5 DNA树枝状分子的制备 | 第60-61页 |
| 2.3.6 电致化学发光生物传感器的制备 | 第61页 |
| 3 结果与讨论 | 第61-71页 |
| 3.1 电极修饰材料和量子点的表征 | 第61-63页 |
| 3.2 电致化学发光生物传感器检测Hg~(2+) 的原理图 | 第63-64页 |
| 3.3 基于信号放大的树枝状量子点探针和酶切循环放大技术电致化学发光检测Hg~(2+) 的PAGE分析 | 第64-66页 |
| 3.4 ECL传感电极不同修饰阶段的电化学表征 | 第66-67页 |
| 3.5 CdSe@ZnS量子点的电致化学发光（ECL） | 第67页 |
| 3.6 ECL生物传感器检测Hg~(2+)的可行性研究 | 第67-68页 |
| 3.7 实验反应条件的优化 | 第68-69页 |
| 3.8 电致化学发光生物传感器检测Hg~(2+) | 第69-70页 |
| 3.9 ECL生物传感器的选择性研究 | 第70-71页 |
| 4 结论 | 第71-72页 |
| 结论 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 攻读学位期间发表及待发表的学术论文目录 | 第85-86页 |
