| 缩略语表 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 文献回顾 | 第16-35页 |
| 1 哮喘气道重塑研究现状 | 第16-20页 |
| 1.1 气道重塑对肺功能和气道反应性的影响 | 第16页 |
| 1.2 气道重塑的病理学改变 | 第16页 |
| 1.3 气道重塑相关机制 | 第16-20页 |
| 2 参与哮喘的主要信号转导通路 | 第20-25页 |
| 2.1 Notch 信号通路 | 第20-21页 |
| 2.2 ERK 信号通路 | 第21页 |
| 2.3 JNK/SAPK 信号通路 | 第21-22页 |
| 2.4 PI3K 信号通路 | 第22页 |
| 2.5 NK-κB 信号通路 | 第22-25页 |
| 3 维生素 D 与哮喘 | 第25-35页 |
| 3.1 维生素 D 的结构、代谢和功能 | 第25-27页 |
| 3.2 维生素 D 与哮喘 | 第27-28页 |
| 3.3 维生素 D 与其他肺部疾病 | 第28-30页 |
| 3.4 维生素 D 在哮喘发病中的可能作用机制 | 第30-35页 |
| 实验一 骨化三醇调节哮喘小鼠气道重塑及 NF-ΚB 信号通路的研究 | 第35-55页 |
| 引言 | 第35-36页 |
| 1 材料 | 第36-41页 |
| 1.1 仪器与试剂 | 第36-38页 |
| 1.2 主要溶液的配制 | 第38-41页 |
| 2 方法 | 第41-48页 |
| 2.1 动物处理 | 第41-42页 |
| 2.2 肺组织病理学检查 | 第42-44页 |
| 2.3 检测小鼠肺组织 NF-κB p65 的蛋白表达水平 | 第44-48页 |
| 2.4 统计学处理 | 第48页 |
| 3 结果 | 第48-52页 |
| 3.1 激发后哮喘发作情况 | 第48-49页 |
| 3.2 各组小鼠肺组织病理学改变差异 | 第49页 |
| 3.3 气道结构形态学测定 | 第49页 |
| 3.4 AB-PAS 染色观察小鼠气道杯状细胞及粘液分泌改变 | 第49-50页 |
| 3.5 Masson 染色观察肺组织胶原沉积情况 | 第50-51页 |
| 3.6 骨化三醇抑制哮喘小鼠肺组织 NF-κB p65 的核移位 | 第51-52页 |
| 4 讨论 | 第52-54页 |
| 5 结语 | 第54-55页 |
| 实验二 骨化三醇对哮喘气道平滑肌细胞凋亡及 NF-ΚB 信号通路的影响 | 第55-79页 |
| 引言 | 第55页 |
| 1 材料 | 第55-58页 |
| 1.1 试剂与仪器（其余同实验一） | 第55-56页 |
| 1.2 主要溶液的配制 | 第56-58页 |
| 2 方法 | 第58-72页 |
| 2.1 ASMCs 的原代培养 | 第58-60页 |
| 2.2 细胞鉴定 | 第60-61页 |
| 2.3 细胞分组 | 第61页 |
| 2.4 流式细胞仪技术检测气道平滑肌细胞的凋亡 | 第61页 |
| 2.5 荧光显微镜形态学 ASMCs 凋亡 | 第61-62页 |
| 2.6 凝胶电泳迁移率法测定 NF-κB 的 DNA 结合活性 | 第62-66页 |
| 2.7 Western bloting 法检测 IκBα的蛋白表达水平 | 第66-69页 |
| 2.8 实时荧光定量 PCR 检测 IκBα的 mRNA 水平 | 第69-72页 |
| 2.9 统计学处理 | 第72页 |
| 3 结果 | 第72-76页 |
| 3.1 ASMCs 生物学特性 | 第72-73页 |
| 3.2 Rocalirol 对哮喘小鼠 ASMCs 凋亡的影响 | 第73-74页 |
| 3.3 Rocalirol 对 ASMCs 中 NF-κB DNA 结合活性的影响 | 第74-75页 |
| 3.4 Rocalirol 对 ASMCs 中 IκBα的蛋白表达的影响 | 第75-76页 |
| 3.5 各组 ASMCs 中 IκBα的 mRNA 表达 | 第76页 |
| 4 讨论 | 第76-78页 |
| 5 结语 | 第78-79页 |
| 小结 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-94页 |
| 个人简历和研究成果 | 第94-95页 |
| 致谢 | 第95页 |
