摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
第一章 绪论 | 第12-24页 |
1.1 薯蓣属概述 | 第12页 |
1.2 甾体皂苷概述 | 第12-13页 |
1.2.1 皂苷简介 | 第12-13页 |
1.2.2 甾体皂苷简介 | 第13页 |
1.3 甾体皂苷的生物活性 | 第13-15页 |
1.3.1 抗癌活性 | 第13-14页 |
1.3.2 抗血栓活性 | 第14页 |
1.3.3 降血脂与降血糖 | 第14页 |
1.3.4 抗炎 | 第14-15页 |
1.3.5 保护心肌 | 第15页 |
1.4 甾体皂苷提取工艺研究进展 | 第15-16页 |
1.4.1 冷浸提取 | 第15页 |
1.4.2 加热搅拌提取 | 第15页 |
1.4.3 超声辅助提取 | 第15-16页 |
1.4.4 微波辅助提取 | 第16页 |
1.4.5 酶法辅助提取 | 第16页 |
1.5 甾体皂苷的检测方法 | 第16-17页 |
1.5.1 分光光度法 | 第16页 |
1.5.2 高效液相法 | 第16-17页 |
1.5.3 转化苷元检测法 | 第17页 |
1.6 薯蓣皂苷元概述 | 第17-18页 |
1.6.1 薯蓣皂苷元简介 | 第17-18页 |
1.6.2 薯蓣皂苷元的药用价值 | 第18页 |
1.7 薯蓣皂苷元的研究进展 | 第18-20页 |
1.7.1 薯蓣皂苷元的制备方法 | 第18-20页 |
1.7.2 薯蓣皂苷元的检测分析方法 | 第20页 |
1.8 离子液体概述 | 第20-22页 |
1.8.1 离子液体简介 | 第20页 |
1.8.2 酸性离子液体 | 第20页 |
1.8.3 离子液体的固定化 | 第20-22页 |
1.9 立题背景和意义 | 第22页 |
1.9.1 背景 | 第22页 |
1.9.2 存在的问题 | 第22页 |
1.10 研究内容和意义 | 第22-24页 |
1.10.1 研究内容 | 第22页 |
1.10.2 研究意义 | 第22-23页 |
1.10.3 研究技术路线 | 第23-24页 |
第二章 盾叶薯蓣中甾体皂苷提取工艺的研究 | 第24-41页 |
2.1 前言 | 第24页 |
2.2 实验材料和仪器 | 第24页 |
2.3 实验方法 | 第24-29页 |
2.3.1 原料预处理 | 第24-25页 |
2.3.2 盾叶薯蓣中重要成分含量测定 | 第25页 |
2.3.3 总甾体皂苷含量测定 | 第25页 |
2.3.4 薯蓣皂苷元得率的计算 | 第25页 |
2.3.5 甾体皂苷传统提取工艺 | 第25-26页 |
2.3.6 超声微波协同萃取总皂苷工艺 | 第26页 |
2.3.7 超声微波辅助离子液体提取总皂苷工艺 | 第26-27页 |
2.3.8 酶法预处理-超声微波协同萃取总甾体皂苷 | 第27-29页 |
2.4 结果分析与讨论 | 第29-39页 |
2.4.1 加热搅拌提取工艺 | 第29页 |
2.4.2 超声微波协同提取总皂苷 | 第29-31页 |
2.4.3 超声微波辅助离子液体提取总皂苷 | 第31-34页 |
2.4.4 酶法预处理-超声微波辅助提取总甾体皂苷及其响应面优化 | 第34-39页 |
2.5 本章小结 | 第39-41页 |
第三章 酸性离子液体催化水解制备薯蓣皂苷元 | 第41-56页 |
3.1 前言 | 第41页 |
3.2 实验材料和仪器 | 第41页 |
3.3 实验方法 | 第41-44页 |
3.3.1 原料预处理 | 第41页 |
3.3.2 甾体皂苷的制备 | 第41-42页 |
3.3.3 传统酸水解方法 | 第42页 |
3.3.4 酸性离子液体催化水解甾体皂苷制备薯蓣皂苷元工艺流程 | 第42页 |
3.3.5 普通酸性离子[EMIm]HSO_4催化水解制备薯蓣皂苷元 | 第42页 |
3.3.6 响应面优化[EMIm]HSO_4催化水解制备薯蓣皂苷元 | 第42-43页 |
3.3.7 功能化酸性离子液体[BHSO_3MIm]HSO_4催化水解制备薯蓣皂苷元 | 第43页 |
3.3.8 微波辅助[BHSO_3MIm]HSO_4催化水解制备薯蓣皂苷元 | 第43-44页 |
3.4 结果分析与讨论 | 第44-55页 |
3.4.1 酸性离子液体[EMIm]HSO_4催化水解制备薯蓣皂苷元 | 第44-46页 |
3.4.2 响应面优化[EMIm]HSO_4催化水解制备薯蓣皂苷元 | 第46-49页 |
3.4.3 功能化酸性离子液体[BHSO_3MIm]HSO_4催化水解制备薯蓣皂苷元 | 第49-50页 |
3.4.4 微波辅助功能化酸性离子[BHSO_3MIm]HSO_4催化水解 | 第50-55页 |
3.5 本章小结 | 第55-56页 |
第四章 酸性离子液体水解机理研究和薯蓣皂苷元质量分析 | 第56-64页 |
4.1 前言 | 第56页 |
4.2 实验材料和仪器 | 第56页 |
4.3 实验方法 | 第56-58页 |
4.3.1 原料预处理 | 第56页 |
4.3.2 甾体皂苷的制备 | 第56-57页 |
4.3.3 [EMIm]HSO_4与[BHSO_3MIm]HSO_4水解能力的比较 | 第57页 |
4.3.4 水解过程中甾体皂苷的变化 | 第57页 |
4.3.5 薯蓣皂苷Dioscin标准品的水解 | 第57页 |
4.3.6 酸性离子液体水解甾体皂苷路径的研究 | 第57页 |
4.3.7 薯蓣皂苷元产品的外貌形态 | 第57页 |
4.3.8 高效液相色谱测定薯蓣皂苷元产品 | 第57页 |
4.3.9 红外光谱测定薯蓣皂苷元产品 | 第57-58页 |
4.4 结果分析与讨论 | 第58-63页 |
4.4.1 [EMIm]HSO_4与[BHSO_3MIm]HSO_4水解比较实验 | 第58页 |
4.4.2 水解过程中甾体皂苷成分变化的研究 | 第58-59页 |
4.4.3 薯蓣皂苷Dioscin标准品的水解和水解中间产物的研究 | 第59-61页 |
4.4.4 酸性离子液体水解制备薯蓣皂苷元的路径分析 | 第61-62页 |
4.4.5 薯蓣皂苷元产品的外貌形态 | 第62页 |
4.4.6 高效液相色谱测定薯蓣皂苷元产品 | 第62-63页 |
4.4.8 红外光谱测定薯蓣皂苷元产品 | 第63页 |
4.5 本章小结 | 第63-64页 |
第五章 固定化酸性离子液体的制备和应用 | 第64-72页 |
5.1 前言 | 第64页 |
5.2 实验材料和仪器 | 第64页 |
5.3 实验方法 | 第64-66页 |
5.3.1 原料预处理 | 第64页 |
5.3.2 甾体皂苷的制备 | 第64-65页 |
5.3.3 固定化酸性离子液体的制备 | 第65页 |
5.3.4 固定化酸性离子液体的表征 | 第65页 |
5.3.5 固定化酸性离子液体催化水解甾体皂苷为薯蓣皂苷元 | 第65-66页 |
5.3.6 固定化酸性离子液体的回收和重复使用 | 第66页 |
5.3.7 固定化酸性离子液体催化水解过程 | 第66页 |
5.4 结果分析与讨论 | 第66-71页 |
5.4.1 固定化酸性离子液体的制备和表征 | 第66-68页 |
5.4.2 固定化酸性离子液体催化反应 | 第68-70页 |
5.4.3 固定化离子液体的回收和循环使用 | 第70页 |
5.4.4 固定化酸性离子液体催化水解过程 | 第70-71页 |
5.5 本章小结 | 第71-72页 |
第六章 同时分离皂苷和淀粉工艺的研究 | 第72-84页 |
6.1 前言 | 第72页 |
6.2 实验材料和仪器 | 第72页 |
6.3 实验方法 | 第72-75页 |
6.3.1 盾叶薯蓣资源综合利用工艺 | 第72页 |
6.3.2 实验步骤操作 | 第72-73页 |
6.3.3 工艺1中淀粉分离工艺优化 | 第73页 |
6.3.4 工艺2中淀粉分离工艺优化 | 第73-74页 |
6.3.5 淀粉得率计算 | 第74页 |
6.3.6 淀粉中的薯蓣皂苷元含量计算 | 第74页 |
6.3.7 薯蓣淀粉理化性质分析 | 第74-75页 |
6.4 结果分析与讨论 | 第75-83页 |
6.4.1 盾叶薯蓣资源综合利用 | 第75页 |
6.4.2 工艺1中淀粉分离工艺优化 | 第75-78页 |
6.4.3 工艺2中淀粉分离工艺优化 | 第78-81页 |
6.4.4 薯蓣淀粉中皂苷元携带量 | 第81页 |
6.4.5 薯蓣淀粉理化性质分析 | 第81-83页 |
6.5 本章小结 | 第83-84页 |
第七章 甾体皂苷抑制细菌生物膜和肺癌细胞的活性 | 第84-92页 |
7.1 前言 | 第84页 |
7.2 实验材料和仪器 | 第84-85页 |
7.3 实验方法 | 第85-86页 |
7.3.1 结晶紫染色法测定甾体皂苷对铜绿假单胞菌生物膜的影响 | 第85页 |
7.3.2 甾体皂苷抑制肺癌A549细胞 | 第85-86页 |
7.4 实验结果与讨论 | 第86-90页 |
7.4.1 甾体皂苷对生物膜抑制效果 | 第86-87页 |
7.4.2 甾体皂苷对肺癌A549细胞抑制效果 | 第87-90页 |
7.5 本章小结 | 第90-92页 |
主要结论与展望 | 第92-95页 |
主要创新点 | 第95-96页 |
致谢 | 第96-97页 |
参考文献 | 第97-106页 |
附录:攻读博士学位期间成果 | 第106页 |