| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 缩略词表 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-43页 |
| 1 恶性肿瘤发生 | 第11-13页 |
| 1.1 环境因素 | 第11-13页 |
| 1.2 内部因素 | 第13页 |
| 2 细胞凋亡与肿瘤 | 第13-19页 |
| 2.1 细胞凋亡概念的提出 | 第14-15页 |
| 2.2 细胞凋亡通路 | 第15-18页 |
| 2.3 细胞凋亡传导途径中主要调节因子 | 第18-19页 |
| 2.4 细胞凋亡的生物学功能 | 第19页 |
| 3 降三萜类化合物及其生物活性 | 第19-41页 |
| 3.1 天然的降齐墩果烷型三萜化合物的植物来源 | 第20-38页 |
| 3.2 生物活性概述 | 第38-41页 |
| 4 本课题研究目的和意义 | 第41-43页 |
| 第二章 北美海蓬子中四种降三萜皂苷抗肿瘤活性的初步研究 | 第43-50页 |
| 1 材料及设备 | 第43-45页 |
| 1.1 细胞株 | 第43页 |
| 1.2 主要试剂 | 第43-44页 |
| 1.3 主要仪器 | 第44页 |
| 1.4 样品 | 第44-45页 |
| 2 实验方法 | 第45-47页 |
| 2.1 细胞培养 | 第45页 |
| 2.2 MTT法测样品作用后肿瘤细胞的存活率 | 第45-46页 |
| 2.3 MTT法测样品作用后正常细胞的存活率 | 第46页 |
| 2.4 统计学处理 | 第46-47页 |
| 3 实验结果 | 第47-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 第三章 Bigelovii A抗肿瘤活性的作用机制研究 | 第50-65页 |
| 1 材料设备 | 第50-51页 |
| 1.1 细胞株和样品 | 第50页 |
| 1.2 主要试剂 | 第50页 |
| 1.3 主要仪器 | 第50-51页 |
| 2 实验方法 | 第51-57页 |
| 2.1 细胞培养 | 第51页 |
| 2.2 MTT法测Bigelovii A对HL-60细胞存活率的影响 | 第51页 |
| 2.3 LDH测定 | 第51-52页 |
| 2.4 Hoechst 33258荧光染色观察细胞核形态改变 | 第52页 |
| 2.5 细胞周期检测 | 第52-53页 |
| 2.6 Annexin V-PI双染检测细胞凋亡和坏死 | 第53页 |
| 2.7 Caspase-3活性测定 | 第53-54页 |
| 2.8 RT-PCR法检测bcl-2和bax mRNA表达 | 第54-56页 |
| 2.9 Western blot检测Caspase-3、Bcl-2和Bax蛋白的表达 | 第56-57页 |
| 2.10 统计学处理 | 第57页 |
| 3 实验结果 | 第57-64页 |
| 3.1 Bigelovii A对HL-60细胞的生长抑制作用 | 第57-58页 |
| 3.2 Bigelovii A对LDH释放的促进作用 | 第58-59页 |
| 3.3 Hoechst 33258荧光染色观察细胞凋亡 | 第59-60页 |
| 3.4 PI单染色法检测细胞凋亡 | 第60页 |
| 3.5 Annexin-V-PI双染色法检测细胞凋亡 | 第60-61页 |
| 3.6 Bigelovii A对HL-60细胞内Caspase-3活性的影响 | 第61-62页 |
| 3.7 RT-PCR检测Bigelovii A对基因bcl-2和bax基因表达的影响 | 第62-63页 |
| 3.8 Western blot检测Bigelovii A对Bcl-2、Bax及Caspase-3蛋白表达的影响 | 第63-64页 |
| 4 讨论 | 第64-65页 |
| 结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-73页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
