| 学位论文数据集 | 第3-4页 |
| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第17-27页 |
| 1、蜂王浆活性蛋白研究 | 第17-20页 |
| 1.1 蜂王浆的化学组成 | 第17页 |
| 1.2 蜂王浆的生物活性 | 第17-19页 |
| 1.2.1 蜂王浆的抗衰老活性 | 第17-18页 |
| 1.2.2 蜂王浆的免疫活性 | 第18页 |
| 1.2.3 蜂王浆的抗肿瘤作用 | 第18页 |
| 1.2.4 蜂王浆的抗菌活性 | 第18页 |
| 1.2.5 其他生物活性用 | 第18-19页 |
| 1.3 蜂王浆生物活性蛋白的研究背景和意义 | 第19页 |
| 1.4 论文选题的内容目的及意义 | 第19-20页 |
| 2、抗肿瘤多肽的优化设计及活性研究 | 第20-27页 |
| 2.1 癌症与抗肿瘤多肽 | 第20页 |
| 2.2 抗肿瘤多肽的作用机制 | 第20-21页 |
| 2.3 抗肿瘤多肽的主要研究内容 | 第21-24页 |
| 2.3.1 抗肿瘤多肽的二级结构 | 第21-22页 |
| 2.3.2 抗肿瘤多肽的生物活性 | 第22-23页 |
| 2.3.2.1 抗肿瘤的抗菌活性 | 第22-23页 |
| 2.3.2.2 抗肿瘤多肽细胞毒性 | 第23页 |
| 2.3.2.3 抗肿瘤多肽的细胞乳酸脱氢酶释放研究 | 第23页 |
| 2.3.3 抗肿瘤多肽活性机理研究 | 第23-24页 |
| 2.3.3.1 细胞凋亡原理 | 第24页 |
| 2.3.3.2 细胞膜裂解原理 | 第24页 |
| 2.4 论文选题的目的及意义 | 第24-27页 |
| 第二章 蜂王浆活性蛋白的筛选、分离与鉴定 | 第27-51页 |
| 1、实验仪器与材料 | 第27-28页 |
| 1.1 实验仪器 | 第27页 |
| 1.2 实验材料 | 第27-28页 |
| 2、蜂王浆活性蛋白的筛选、分离与鉴定的实验方法 | 第28-35页 |
| 2.1 蜂王浆分级提取 | 第28-29页 |
| 2.2 SDS-PAGE实验 | 第29-30页 |
| 2.3 细胞毒性实验方法 | 第30-31页 |
| 2.4 蜂王浆的细胞毒性 | 第31-32页 |
| 2.5 蛋白酶解 | 第32页 |
| 2.6 蜂王浆醇溶蛋白的高效液相(HPLC)分离 | 第32-33页 |
| 2.7 葡聚糖凝胶色谱(GPC)分离 | 第33页 |
| 2.8 蛋白质鉴定(Protein Identification)检测 | 第33-34页 |
| 2.9 Edman降解 | 第34页 |
| 2.10 细胞流式实验检测细胞凋亡 | 第34-35页 |
| 3、蜂王浆活性蛋白筛选、分离与鉴定的结果与分析 | 第35-51页 |
| 3.1 蜂王浆蛋白的提取与分析 | 第35-37页 |
| 3.1.1 蜂王浆蛋白质初步提取的结果 | 第35-36页 |
| 3.1.2 SDS-PAGE分析蜂王浆蛋白质组分的结果 | 第36-37页 |
| 3.2 蜂王浆活性蛋白的筛选 | 第37-42页 |
| 3.2.1 细胞MTT实验筛选蜂王浆活性蛋白的结果 | 第37-38页 |
| 3.2.2 两种蜂王浆醇溶蛋白的活性对比 | 第38-41页 |
| 3.2.3 酶解法分析蜂王浆醇溶蛋白的活性片段的结果 | 第41-42页 |
| 3.3 蜂王浆醇溶蛋白纯化的结果与分析 | 第42-45页 |
| 3.3.1 高效液相色谱纯化蜂王浆醇溶蛋白的结果 | 第43页 |
| 3.3.2 葡聚糖凝胶色谱法纯化蜂王浆醇溶蛋白的结果 | 第43-45页 |
| 3.4 蜂王浆醇溶蛋白纯化组分的的定性检测结果 | 第45-47页 |
| 3.4.1 蛋白质鉴定(Protein Identification)检测RJF的同源性 | 第45-46页 |
| 3.4.2 Edman降解检测RJF的一级结构 | 第46-47页 |
| 3.5 RJF的活性结果分析 | 第47-48页 |
| 3.5.1 RJF的抗菌活性实验结果分析 | 第47页 |
| 3.5.2 RJF的抗肿瘤活性实验结果分析 | 第47-48页 |
| 3.6 RJF细胞凋亡实验结果分析 | 第48-50页 |
| 3.7 蜂王浆活性蛋白筛选、分离鉴定的结果小结 | 第50-51页 |
| 第三章 抗肿瘤多肽的优化设计与活性研究 | 第51-79页 |
| 1、抗肿瘤多肽的优化设计与活性研究实验 | 第51-57页 |
| 1.1 多肽优化设方法 | 第51-53页 |
| 1.2 多肽的合成与制备 | 第53-54页 |
| 1.3 多肽二级结构观察 | 第54-55页 |
| 1.4 多肽最低抑菌浓度 | 第55页 |
| 1.5 多肽的细胞毒性(MTT) | 第55-56页 |
| 1.6 乳酸脱氢酶释放(LDH) | 第56页 |
| 1.7 细胞流式实验检测细胞凋亡 | 第56页 |
| 1.8 激光共聚焦显微镜下观察死/活细胞染色 | 第56-57页 |
| 2、抗肿瘤多肽优设计结果 | 第57-79页 |
| 2.1 多肽优化设计结果 | 第57-62页 |
| 2.1.1 多肽合成与制备结果 | 第57-60页 |
| 2.1.2 ILA系列与ILV系列的质谱鉴定结果 | 第60-62页 |
| 2.2 ILA系列与ILV系列的结构与疏水性分析结果 | 第62-67页 |
| 2.2.1 ILA系列与ILV系列的二级结构观察结果 | 第62-66页 |
| 2.2.2 ILA系列与ILV系列多肽的空间结构与疏水性结果分析 | 第66-67页 |
| 2.3 ILA系列与ILV系列的最低抑菌浓度(MIC)实验结果与分析 | 第67-69页 |
| 2.4 多肽的细胞毒性(MTT)实验结果与分析 | 第69-73页 |
| 2.4.1 ILA系列多肽的细胞毒性(MTT)实验结果与分析 | 第69-70页 |
| 2.4.2 ILV系列多肽的细胞毒性(MTT)实验结果与分析 | 第70-71页 |
| 2.4.3 缩短序列系列多肽的细胞毒性实验结果与分析 | 第71-72页 |
| 2.4.4 LKA模式多肽的细胞毒性(MTT)实验结果与分析 | 第72-73页 |
| 2.5 多肽的细胞活性机理研究 | 第73-76页 |
| 2.5.1 ILA系列多肽的乳酸脱氢酶释放(LDH)实验结果与分析 | 第74页 |
| 2.5.2 ILA系列多肽的细胞凋亡实验 | 第74-75页 |
| 2.5.3 ILA激光共聚焦显微镜下观察死/活细胞的染色结果与分析 | 第75-76页 |
| 2.6 抗肿瘤多肽的优化设计与活性研究的小结 | 第76-79页 |
| 第四章 结论与展望 | 第79-81页 |
| 参考文献 | 第81-85页 |
| 致谢 | 第85-87页 |
| 研究成果及发表论文 | 第87-89页 |
| 作者简介 | 第89页 |
| 作者导师介绍 | 第89-91页 |
| 附件 | 第91-92页 |
