| 中英文缩写词对照 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| 英文摘要 | 第11-13页 |
| 1 引言 | 第14-18页 |
| 1.1 酒精性肝病 | 第14页 |
| 1.2 巨噬细胞极化 | 第14-16页 |
| 1.3 端粒酶逆转录酶 | 第16-18页 |
| 2 实验材料 | 第18-26页 |
| 2.1 实验动物 | 第18页 |
| 2.2 实验细胞 | 第18页 |
| 2.3 药品与试剂 | 第18-20页 |
| 2.4 主要溶液的配制 | 第20-24页 |
| 2.5 仪器与设备 | 第24-25页 |
| 2.6 图像分析软件 | 第25-26页 |
| 3 实验方法 | 第26-46页 |
| 3.1 Lieber-DeCarli液体饮食诱导小鼠酒精性脂肪肝模型 | 第26-27页 |
| 3.2 血清TG、TCH的检测 | 第27-28页 |
| 3.3 血清ALT、AST的检测 | 第28页 |
| 3.4 苏木精-伊红(HE)染色 | 第28-29页 |
| 3.5 油红染色 | 第29页 |
| 3.6 免疫组化 | 第29-30页 |
| 3.7 免疫荧光双染 | 第30-31页 |
| 3.8 枯否细胞KCs的提取 | 第31-32页 |
| 3.9 KCs端粒酶活性的检测 | 第32-34页 |
| 3.10 细胞培养和处理 | 第34页 |
| 3.11 流式细胞术 | 第34页 |
| 3.12 免疫荧光单染 | 第34-35页 |
| 3.13 实时定量PCR | 第35-37页 |
| 3.14 酶联免疫吸附试验ELISA | 第37-38页 |
| 3.15 蛋白免疫印迹方法检测蛋白的表达 | 第38-42页 |
| 3.16 瞬时转染mTERT-siRNA进入RAW 264.7 | 第42页 |
| 3.17 mTERT质粒构建和转染 | 第42-45页 |
| 3.18 统计学分析 | 第45-46页 |
| 4 结果 | 第46-71页 |
| 4.1 ALD模型的建立及其病理学改变 | 第46-48页 |
| 4.2 体内外乙醇刺激端粒酶活化和TERT表达情况 | 第48-51页 |
| 4.2.1 ALD进展期TERT表达水平升高，TA活性增加 | 第48-50页 |
| 4.2.2 乙醇体外刺激RAW264.7细胞产生TERT | 第50-51页 |
| 4.3 体内外乙醇对巨噬细胞极化的影响 | 第51-55页 |
| 4.3.1 ALD组小鼠KCs表型的鉴定 | 第51-53页 |
| 4.3.2 乙醇体外刺激RAW264.7细胞其表型的改变 | 第53-55页 |
| 4.4 体内外TERT与巨噬细胞极化的关系及可能的作用机制 | 第55-71页 |
| 4.4.1 体外诱导小鼠caMφ/aaMφ型巨噬细胞 | 第55页 |
| 4.4.2 体外小鼠巨噬细胞表型的相互转换 | 第55-57页 |
| 4.4.3 体外caMφ型巨噬细胞TERT高表达 | 第57页 |
| 4.4.4 体外巨噬细胞表型转换过程中TERT的可塑性表达 | 第57-59页 |
| 4.4.5 si-mTERT沉默caMφ型巨噬细胞中TERT内源性表达 | 第59-60页 |
| 4.4.6 mTERT沉默可下调caMφ型巨噬细胞标志物 | 第60-61页 |
| 4.4.7 外源性过表达小鼠caMφ/aaMφ型巨噬细胞中TERT水平 | 第61-63页 |
| 4.4.8 mTERT过表达可上调caMφ型巨噬细胞标志物 | 第63-64页 |
| 4.4.9 mTERT过表达对aaMφ型极化无影响 | 第64-65页 |
| 4.4.10 ALD和体外caMφ型巨噬细胞中NF-κB通路被激活 | 第65-67页 |
| 4.4.11 TERT通过NF-κB通路调控caMφ型巨噬细胞极化 | 第67-69页 |
| 4.4.12 NF-κB通路可调控caMφ型巨噬细胞中TERT体外表达 | 第69-70页 |
| 4.4.13 NF-κB通路体外可调控caMφ型巨噬细胞极化 | 第70-71页 |
| 5 讨论 | 第71-77页 |
| 6 结论 | 第77-79页 |
| 参考文献 | 第79-88页 |
| 附录 | 第88-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |
| 综述 | 第90-123页 |
| 参考文献 | 第112-123页 |
