| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 缩略词表 | 第8-9页 |
| 1.前言 | 第9-23页 |
| 1.1 大豆的重要价值及生产现状 | 第9页 |
| 1.2 共生固氮的意义 | 第9-10页 |
| 1.3 油菜素甾醇的合成、信号转导途径及功能 | 第10-15页 |
| 1.3.1 油菜素甾醇的合成途径 | 第10-12页 |
| 1.3.2 油菜素甾醇的信号转导途径 | 第12-13页 |
| 1.3.3 油菜素甾醇对植物生长发育的调控机制 | 第13-14页 |
| 1.3.4 油菜素甾醇合成及信号转导途径关键元件在大豆中的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.4 豆科植物根瘤的形成和发育的调节机制 | 第15-19页 |
| 1.4.1 根瘤菌侵染的分子机制 | 第15-18页 |
| 1.4.2 根瘤自调节途径的分子机制 | 第18-19页 |
| 1.5 植物激素对豆科植物结瘤的调节 | 第19-22页 |
| 1.5.1 油菜素甾醇对豆科植物结瘤的调节 | 第19-20页 |
| 1.5.2 其他植物激素对豆科植物结瘤的调节 | 第20-22页 |
| 1.6 研究目的 | 第22-23页 |
| 2.材料与方法 | 第23-30页 |
| 2.1 材料 | 第23-25页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第23页 |
| 2.1.2 菌株 | 第23页 |
| 2.1.3 质粒 | 第23页 |
| 2.1.4 营养液和培养基配方 | 第23-24页 |
| 2.1.5 常用实验耗材 | 第24页 |
| 2.1.6 常用实验试剂及其他 | 第24页 |
| 2.1.7 常用仪器设备 | 第24-25页 |
| 2.2 方法 | 第25-30页 |
| 2.2.1 植物材料灭菌方法 | 第25页 |
| 2.2.2 植物材料培养方法 | 第25-26页 |
| 2.2.3 外源施加油菜素甾醇的方法 | 第26页 |
| 2.2.4 大豆基因组DNA的提取方法（CTAB法） | 第26页 |
| 2.2.5 大豆RNA的提取方法 | 第26-27页 |
| 2.2.6 实时荧光定量PCR实验及分析方法 | 第27页 |
| 2.2.7 载体构建方法 | 第27-28页 |
| 2.2.8 发根农杆菌K599感受态制备方法 | 第28页 |
| 2.2.9 大豆毛根转化方法 | 第28-29页 |
| 2.2.10 大豆根瘤菌USDA110接种方法 | 第29页 |
| 2.2.11 大豆固氮酶活的测量方法 | 第29-30页 |
| 3.结果与分析 | 第30-41页 |
| 3.1 大豆BR报告系统的建立 | 第30-34页 |
| 3.1.1 大豆中BR合成基因CPD及CYP90D1的鉴定及表达分析 | 第30-32页 |
| 3.1.2 GmCPD和GmCYP90D1响应外源BR信号 | 第32-34页 |
| 3.2 外源BR处理抑制大豆结瘤 | 第34-36页 |
| 3.3 外源BR处理抑制早期结瘤信号的输出 | 第36-37页 |
| 3.4 BR通过其信号通路抑制大豆结瘤 | 第37-41页 |
| 3.4.1 大豆BR信号通路下游关键转录因子BES1的鉴定及表达分析 | 第37-39页 |
| 3.4.2 GmBES1抑制大豆结瘤 | 第39-41页 |
| 4.结果与讨论 | 第41-44页 |
| 4.1 总结 | 第41-42页 |
| 4.2 讨论 | 第42页 |
| 4.3 展望 | 第42-44页 |
| 参考文献 | 第44-58页 |
| 附录 | 第58-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
