摘要 | 第6-9页 |
Abstract | 第9-12页 |
第一章 绪论 | 第13-16页 |
第二章 材料与方法 | 第16-29页 |
2.1 实验材料 | 第16-19页 |
2.1.1 主要仪器及设备 | 第16页 |
2.1.2 主要试剂和耗材 | 第16-17页 |
2.1.3 细胞株及实验动物 | 第17-18页 |
2.1.4 主要试剂配置 | 第18-19页 |
2.2 实验方法 | 第19-29页 |
2.2.1 HE染色组织芯片 | 第19-20页 |
2.2.2 免疫组织化学染色检测TLR3和NF-KB表达 | 第20页 |
2.2.3 设计dsRNA | 第20-21页 |
2.2.4 筛选dsRNA | 第21-22页 |
2.2.5 NF-κB活性检测(核浆分离实验) | 第22页 |
2.2.6 细胞凋亡检测 | 第22-23页 |
2.2.7 Transwell小室检测细胞迁移能力 | 第23页 |
2.2.8 CCK-8法检测细胞增殖能力 | 第23页 |
2.2.9 qRT-PCR法检测HepG2.2.15细胞HBsAg和HBcAgmRNA表达水平 | 第23-24页 |
2.2.10 Western blot检测HepG2.2.15细胞HBsAg和HBcAg蛋白表达水平 | 第24-25页 |
2.2.11 免疫组织化学法检测HepG2.2.15细胞HBsAg和HBcAg表达水平 | 第25-26页 |
2.2.12 动物试验 | 第26-27页 |
2.2.13 制备大鼠肝癌组织石蜡包埋组织切片 | 第27页 |
2.2.14 大鼠肝癌组织免疫组化染色 | 第27-28页 |
2.2.15 统计分析 | 第28-29页 |
第三章 结果 | 第29-43页 |
3.1免疫组织化学法检测TLR3和NF-icB在人HCC组织中的表达 | 第29-30页 |
3.2 筛选dsRNA | 第30-31页 |
3.3 NF-kB的活性检测 | 第31-32页 |
3.4 BM-06协同索拉菲尼促进HepG2.2.15细胞的调亡 | 第32-33页 |
3.5 dsRNA协同索拉菲尼抑制HepG2.2.15细胞的迁移能力 | 第33-34页 |
3.6 BM-06协同索拉菲尼抑制HepG2.2.15细胞的增殖 | 第34-35页 |
3.7 dsRNA抑制HepG2.2.15细胞分泌HBV | 第35-37页 |
3.8 dsRNA协同索拉菲尼抑制大鼠原位肝癌生长 | 第37-43页 |
第四章 讨论 | 第43-48页 |
第五章 结论 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-53页 |
英文缩写词表 | 第53-55页 |
综述 | 第55-66页 |
综述参考文献 | 第64-66页 |
在攻读硕士学位期间公开发表的论文 | 第66-67页 |
致谢 | 第67-68页 |
附录:攻读学位期间获得的主要荣誉 | 第68页 |