| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第11-42页 |
| 1.1 引言 | 第11页 |
| 1.2 组织工程血管模拟 | 第11-14页 |
| 1.2.1 天然材料 | 第12-13页 |
| 1.2.2 合成材料 | 第13页 |
| 1.2.3 复合材料 | 第13-14页 |
| 1.3 微流控技术在血管模拟中的应用 | 第14-21页 |
| 1.3.1 微流控芯片材料 | 第15-16页 |
| 1.3.2 微流控芯片的制作 | 第16-18页 |
| 1.3.3 PDMS芯片在血管模拟中的应用 | 第18-21页 |
| 1.4 水凝胶材料在血管模拟中的应用 | 第21-29页 |
| 1.4.1 水凝胶材料的分类 | 第22-24页 |
| 1.4.2 水凝胶填充的PDMS芯片在血管中的应用 | 第24-27页 |
| 1.4.3 水凝胶微流控芯片在血管模拟中的应用 | 第27-29页 |
| 1.5 本论文的立意及研究内容 | 第29-30页 |
| 1.6 参考文献 | 第30-42页 |
| 第2章 纤维素多孔水凝胶的构建 | 第42-62页 |
| 2.1 引言 | 第42-44页 |
| 2.2 实验部分 | 第44-49页 |
| 2.2.1 仪器装置 | 第44页 |
| 2.2.2 材料与试剂 | 第44-46页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第46-49页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第49-58页 |
| 2.3.1 化学交联纤维素/胶原蛋白水凝胶 | 第49-53页 |
| 2.3.2 物理交联纤维素/胶原蛋白水凝胶 | 第53-58页 |
| 2.4 本章小结 | 第58-59页 |
| 2.5 参考文献 | 第59-62页 |
| 第3章 基于人造血管三维微流控模型的肿瘤细胞转移模拟研究 | 第62-80页 |
| 3.1 引言 | 第62-63页 |
| 3.2 实验部分 | 第63-68页 |
| 3.2.1 仪器装置 | 第63页 |
| 3.2.2 材料与试剂 | 第63-64页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第64-68页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第68-77页 |
| 3.3.1 3D血管管腔的形成及血液动力学的模拟 | 第68-71页 |
| 3.3.2 VEGF刺激内皮细胞穿过人造血管壁的迁移行为 | 第71-73页 |
| 3.3.3 肿瘤细胞穿过人造血管壁进入血管内表面的迁移行为 | 第73-74页 |
| 3.3.4 肿瘤细胞在人造血管内表面的粘附以及外渗行为 | 第74-77页 |
| 3.4 本章小结 | 第77页 |
| 3.5 参考文献 | 第77-80页 |
| 第4章 基于海藻酸钠可牺牲模板体外构建三维血管网络 | 第80-98页 |
| 4.1 引言 | 第80-81页 |
| 4.2 实验部分 | 第81-89页 |
| 4.2.1 仪器装置 | 第81-82页 |
| 4.2.2 材料与试剂 | 第82页 |
| 4.2.3 PDMS芯片的设计与制作 | 第82-84页 |
| 4.2.4 海藻酸钠可牺牲模板的制备 | 第84-86页 |
| 4.2.5 三维立体微通道水凝胶的制备 | 第86-87页 |
| 4.2.6 模板表面形貌的表征 | 第87页 |
| 4.2.7 水凝胶的性质表征 | 第87-89页 |
| 4.2.8 细胞培养 | 第89页 |
| 4.2.9 活细胞成像和荧光免疫染色 | 第89页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第89-95页 |
| 4.3.1 可牺牲模板制备及三维管腔水凝胶芯片形成 | 第89-91页 |
| 4.3.2 具有三维连通微流通道水凝胶的制备 | 第91-92页 |
| 4.3.3 内皮细胞在通道内表面的粘附及其对流体剪切力的响应行为 | 第92-94页 |
| 4.3.4 内皮细胞单层屏障功能表征 | 第94-95页 |
| 4.4 本章小结 | 第95页 |
| 4.5 参考文献 | 第95-98页 |
| 附录：攻读博士学位期间已发表和待发表的科研成果 | 第98-99页 |
| 致谢 | 第99-100页 |
