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乙型肝炎病毒(HBV)诱导环加氧酶2(COX-2)表达的分子机制研究

摘要第5-7页
Abstract第7-8页
目录第9-14页
引言第14-16页
第一部分 背景综述第16-57页
    第一章 乙型肝炎病毒第16-31页
        1.1 HBV的分子生物学第16-17页
        1.2 HBV的复制和转录第17-18页
        1.3 HBV编码的蛋白质第18-20页
            1.3.1 核壳蛋白第18页
            1.3.2 多聚酶蛋白第18页
            1.3.3 包膜蛋白第18-19页
            1.3.4 X蛋白第19-20页
        1.4 HBV的感染和致病第20-24页
            1.4.1 急性乙肝病毒感染第20-21页
            1.4.2 慢性乙肝病毒感染第21-23页
            1.4.3 肝硬化,肝衰竭和肝癌第23-24页
        1.5 HBV的治疗第24-31页
            1.5.1 干扰素第24-27页
            1.5.2 核苷类似物第27-29页
            1.5.3 HBV的治疗展望第29-31页
    第二章 HBx蛋白的功能第31-38页
        2.1 HBx概述第31页
        2.2 HBx在乙肝病毒生活周期中的作用第31-32页
        2.3 HBx的转录激活作用第32-33页
        2.4 HBx激活细胞质信号转导途径第33-34页
        2.5 HBx作用的分子靶标及其机制第34-36页
        2.6 HBx和细胞凋亡第36-38页
    第三章 环加氧酶2(COX-2)第38-49页
        3.1 COX-2表达的调控第39页
        3.2 COX-2酶活性的调控第39-42页
            3.2.1 NSAlDs对COX-2的抑制第39-40页
            3.2.2 COX-2特异性的结构基础第40-41页
            3.2.3 COX-2特异性预测第41页
            3.2.4 COX-2特异性抑制剂的治疗用途第41-42页
        3.3 COX-2的病理和生理学功能第42-49页
            3.3.1 COX-2和中枢神经系统第42-43页
            3.3.2 COX-2和癌症第43-44页
            3.3.3 COX-2和胃肠道功能第44-45页
            3.3.4 COX-2和肾功能第45-46页
            3.3.5 COX-2和心血管系统第46-48页
            3.3.6 COX-2和生殖性功能第48-49页
    第四章 DNA甲基化修饰第49-57页
        4.1 甲基化胞嘧啶和CpG岛的分布第49-50页
        4.2 维持性甲基化作用第50-51页
        4.3 从头甲基化作用第51页
        4.4 DNA甲基化和转录抑制第51-54页
        4.5 DNA去甲基化和发育及组织特异性分化第54-55页
        4.6 DNA甲基化和癌症第55-57页
第二部分 研究工作第57-98页
    第五章 HBV诱导COX-2表达的研究第57-70页
        5.1 前言第57页
        5.2 实验材料第57-58页
            5.2.1 临床样本第57页
            5.2.2 菌种和质粒第57页
            5.2.3 细胞第57-58页
            5.2.4 试剂第58页
        5.3 实验方法第58-65页
            5.3.1 血清中PGE2的检测第58页
            5.3.2 转染用质粒DNA的提取第58-59页
            5.3.3 真核细胞的培养(复苏,培养及冻存)第59-60页
            5.3.4 真核细胞的转染第60页
            5.3.5 细胞总RNA提取以及逆转录PCR第60-62页
            5.3.6 Western blot第62-64页
            5.3.7 荧光素酶活性检测第64-65页
        5.4 实验结果第65-68页
            5.4.1 清学结果第65页
            5.4.2 HBV能够诱导COX-2的表达第65-66页
            5.4.3 HBV的X蛋白能够诱导COX-2的表达第66-68页
        5.5 讨论第68-70页
    第六章 HBx激活COX-2启动子顺式元件的确定第70-74页
        6.1 前言第70页
        6.2 实验材料第70页
            6.2.1 质粒第70页
            6.2.2 细胞第70页
            6.2.3 试剂第70页
        6.3 实验方法第70-71页
            6.3.1 转染用质粒DNA的提取(见5.3.2)第70页
            6.3.2 真核细胞的培养(见5.3.3)第70页
            6.3.3 真核细胞的转染(见5.3.4)第70-71页
            6.3.4 荧光素酶活性检测(见5.3.7)第71页
            6.3.5 Western blot(见5.3.6)第71页
        6.4 实验结果第71-72页
            6.4.1 C/EBP和CRE位点在HBx上调COX-2启动子活性中起重要作用第71-72页
            6.4.2 转录因子C/EBPβ在HBx上调COX-2启动子活性中起重要作用第72页
        6.5 讨论第72-74页
    第七章 与HBx相互作用的转录因子的鉴定及其与COX-2启动子结合的分析第74-85页
        7.1 前言第74页
        7.2 实验材料第74-75页
            7.2.1 质粒第74页
            7.2.2 细胞第74页
            7.2.3 试剂第74-75页
        7.3 实验方法第75-79页
            7.3.1 转染用质粒DNA的提取(见5.3.2)第75页
            7.3.2 真核细胞的培养(见5.3.3)第75页
            7.3.3 真核细胞的转染(见5.3.4)第75页
            7.3.4 荧光素酶活性检测(见5.3.7)第75页
            7.3.5 Western blot(见5.3.6)第75页
            7.3.6 免疫共沉淀(CoIP)第75-76页
            7.3.7 非变性电泳凝胶迁移实验(EMSA)第76-77页
            7.3.8 染色质免疫沉淀实验(ChIP)第77-79页
            7.3.9 哺乳动物双杂交实验第79页
        7.4 实验结果第79-83页
            7.4.1 免疫共沉淀研究HBx和C/EBPβ的相互作用第79-80页
            7.4.2 哺乳动物双杂交系统验HBx和C/EBPβ的相互作用第80页
            7.4.3 HBx增强C/EBPβ在COX-2启动子上结合的体外实验鉴定第80-81页
            7.4.4 HBx增强C/EBPβ在COX-2启动子上结合的体内实验鉴定第81-82页
            7.4.5 转录因子CBP/p300在HBx上调COX-2启动子活性中起重要作用第82-83页
            7.4.6 HBx增强CBP/p300在COX-2启动子上结合的体内实验鉴定第83页
        7.5 讨论第83-85页
    第八章 HBV诱导COX-2表达中表观遗传学的研究第85-96页
        8.1 前言第85页
        8.2 实验材料第85-86页
            8.2.1 质粒第85页
            8.2.2 细胞第85页
            8.2.3 试剂第85-86页
        8.3 实验方法第86-90页
            8.3.1 转染用质粒DNA的提取(见5.3.2)第86页
            8.3.2 真核细胞的培养(见5.3.3)第86页
            8.3.3 真核细胞的转染(见5.3.4)第86页
            8.3.4 荧光素酶活性检测(见5.3.7)第86页
            8.3.5 Western blot(见5.3.6)第86页
            8.3.6 非变性电泳凝胶迁移实验(见7.3.7)第86页
            8.3.7 染色质免疫沉淀实验(见7.3.8)第86页
            8.3.8 甲基化测序分析第86-89页
            8.3.9 甲基转移酶活性测定第89-90页
        8.4 实验结果第90-94页
            8.4.1 甲基化和COX-2启动子活性密切相关第90页
            8.4.2 HBV的表达能够降低COX-2启动子区域的甲基化水平第90-91页
            8.4.3 位点去甲基化对NF-AT在COX-2启动子上结合影响的体外实验鉴定第91-92页
            8.4.4 HBV的表达对细胞内甲基转移酶活性的影响第92-93页
            8.4.5 不同甲基转移酶对COX-2启动子活性的影响第93-94页
            8.4.6 HBV的表达影响甲基转移酶在COX-2启动子上结合的鉴定第94页
        8.5 讨论第94-96页
    第九章 研究总结第96-98页
参考文献第98-122页
发表论文第122-124页
致谢第124页

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