摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
英文缩写表 | 第13-14页 |
引言 | 第14-16页 |
第一章 文献综述 | 第16-24页 |
1.1 糖尿病视网膜病变的发生机制 | 第16-18页 |
1.1.1 多元醇通路增加 | 第16页 |
1.1.2 蛋白激酶C激活 | 第16-17页 |
1.1.3 非酶糖基化作用 | 第17页 |
1.1.4 神经退行性病变 | 第17-18页 |
1.2 自噬在糖尿病视网膜病变中的作用机制 | 第18-19页 |
1.2.1 自噬的发生过程 | 第18页 |
1.2.2 自噬与凋亡的关系 | 第18-19页 |
1.2.3 自噬在糖尿病视网膜病变中的作用 | 第19页 |
1.3 Müller细胞与糖尿病视网膜病变的关系 | 第19-21页 |
1.3.1 Müller细胞的形态结构 | 第20页 |
1.3.2 Müller细胞的生理功能 | 第20页 |
1.3.3 Müller细胞与DR | 第20-21页 |
1.4 糖尿病视网膜病变的治疗进展 | 第21-22页 |
1.4.1 醛糖还原酶抑制剂(ARI) | 第21页 |
1.4.2 选择性PKC-β 受体抑制剂 | 第21-22页 |
1.4.3AGEs抑制剂 | 第22页 |
1.5 黄连素在糖尿病并发症中的药理作用研究进展 | 第22-24页 |
1.5.1 黄连素与糖尿病心血管病变 | 第22页 |
1.5.2 黄连素与糖尿病神经病变 | 第22-23页 |
1.5.3 黄连素与糖尿病肾脏病变 | 第23-24页 |
第二章 实验材料与方法 | 第24-36页 |
2.1 实验材料 | 第24-30页 |
2.1.1 实验动物 | 第24页 |
2.1.2 药品与试剂 | 第24-25页 |
2.1.3 主要仪器 | 第25-26页 |
2.1.4 主要溶液配制 | 第26-30页 |
2.2 实验方法 | 第30-36页 |
2.2.1 模型制备及分组 | 第30-31页 |
2.2.2 视网膜电图 | 第31页 |
2.2.3 免疫组织化学染色 | 第31-32页 |
2.2.4 TUNEL染色 | 第32页 |
2.2.5 Müller细胞培养 | 第32-33页 |
2.2.7 Müller细胞鉴定 | 第33页 |
2.2.8 MTT实验 | 第33页 |
2.2.9 HG模型建立 | 第33页 |
2.2.10 BBR给药浓度筛选 | 第33-34页 |
2.2.11 Hoechst 33258 染色 | 第34页 |
2.2.12 MDC染色 | 第34页 |
2.2.13 Western blot | 第34-35页 |
2.2.14 统计学分析 | 第35-36页 |
第三章 实验结果 | 第36-52页 |
3.1 ERG观察HGSD对T2DM小鼠视网膜功能的影响 | 第36页 |
3.2 TUNEL染色观察HGSD对2型糖尿病小鼠视网膜神经细胞凋亡的影响 | 第36-37页 |
3.3 HGSD对T2DM小鼠视网膜Bax、Bcl-2 表达的影响 | 第37-39页 |
3.4 HGSD对T2DM小鼠视网膜自噬相关蛋白表达的影响 | 第39-41页 |
3.5 HGSD对T2DM小鼠视网膜p-AMPK、p-mTOR的影响 | 第41-43页 |
3.6 Müller细胞鉴定 | 第43页 |
3.7 HG对Müller细胞生存率的影响 | 第43-44页 |
3.8 BBR给药浓度的确定 | 第44页 |
3.9 BBR对HG诱导Müller细胞损伤的保护作用 | 第44-45页 |
3.10 Hoechst33258染色检测BBR对HG诱导Müller细胞凋亡水平的影响 | 第45页 |
3.11 BBR对HG诱导Müller细胞凋亡相关蛋白的影响 | 第45-46页 |
3.12 MDC染色检测BBR对HG诱导Müller细胞自噬水平的影响 | 第46-47页 |
3.13 BBR对HG诱导Müller细胞自噬相关蛋白表达的影响 | 第47页 |
3.14 应用Compound C和AICAR观察BBR对HG诱导Müller细胞中AMPK/mTOR信号通路的影响 | 第47-48页 |
3.15 应用Compound C和AICAR观察BBR对HG条件下Müller细胞凋亡水平的影响 | 第48-50页 |
3.16 应用Compound C和AICAR观察BBR对HG条件下Müller细胞自噬水平的影响 | 第50-52页 |
第四章 讨论 | 第52-56页 |
第五章 结论 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-63页 |
致谢 | 第63页 |