| 摘要 | 第4-6页 |
| 英文摘要 | 第6-7页 |
| 第一章 引言 | 第10-12页 |
| 第二章 材料与方法 | 第12-23页 |
| 2.1 实验对象 | 第12页 |
| 2.2 慢性胰腺炎（CHRONIC PANCREATITIS，CP）大鼠模型的建立 | 第12页 |
| 2.2.1 实验用药 | 第12页 |
| 2.2.2 造模方法 | 第12页 |
| 2.3 大鼠腹部机械痛阈检测 | 第12-13页 |
| 2.3.1 实验仪器 | 第12页 |
| 2.3.2 实验用药 | 第12-13页 |
| 2.3.3 测试方法 | 第13页 |
| 2.4 胰腺相关DRG神经元的标记、急性分离与培养 | 第13-15页 |
| 2.4.1 实验仪器 | 第13页 |
| 2.4.2 实验试剂 | 第13-14页 |
| 2.4.3 荧光染料Dil标记胰腺相关DRG神经元 | 第14页 |
| 2.4.4 DRG神经元的急性分离与培养 | 第14-15页 |
| 2.5 全细胞膜片钳实验 | 第15-19页 |
| 2.5.1 实验仪器 | 第15页 |
| 2.5.2 实验试剂及药品 | 第15页 |
| 2.5.3 拉制玻璃微电极 | 第15页 |
| 2.5.4 全细胞膜片钳记录 | 第15-18页 |
| 2.5.5 神经元兴奋性记录 | 第18-19页 |
| 2.6 钙成像记录 | 第19-20页 |
| 2.6.1 实验仪器 | 第19页 |
| 2.6.2 实验试剂及药品 | 第19页 |
| 2.6.3 荧光染料染色 | 第19页 |
| 2.6.4 钙成像记录 | 第19-20页 |
| 2.7 Western Blotting检测蛋白表达水平 | 第20-23页 |
| 2.7.1 实验试剂 | 第20-21页 |
| 2.7.2 实验仪器 | 第21页 |
| 2.7.3 实验方法 | 第21-23页 |
| 第三章 实验结果 | 第23-37页 |
| 3.1 TGFΒ1 对胰腺相关DRG神经元兴奋性的急性作用 | 第23-29页 |
| 3.1.1 TGFβ1 使DRG神经元细胞膜去极化和诱发动作电位 | 第23页 |
| 3.1.2 TGFβ1 灌流DRG神经元显著提高其兴奋性 | 第23-25页 |
| 3.1.3 TGFβ1 使DRG神经元细胞内钙离子浓度上升 | 第25-27页 |
| 3.1.4 TGFβⅠ型受体介导TGFβ1 诱发的DRG神经元胞内钙离子浓度上升 | 第27-28页 |
| 3.1.5 外源性TGFβ1 导致正常大鼠产生腹部痛觉过敏 | 第28-29页 |
| 3.2 TGFΒ1 参与慢性胰腺炎（CP）大鼠的腹部痛觉过敏 | 第29-37页 |
| 3.2.1 与对照组相比，CP大鼠胰腺中TGFβ1 表达升高，胰腺相关节段的DRG中TGFβ1 及其Ⅰ和Ⅱ型受体的表达升高 | 第29-32页 |
| 3.2.2 与对照组相比，外源TGFβ1 使CP大鼠胰腺相关DRG神经元去极化及放电更加显著 | 第32-33页 |
| 3.2.3 与对照组相比，外源 TGFβ1 使 CP 大鼠胰腺相关 DRG 神经元细胞内钙离子浓度上升更加显著 | 第33-34页 |
| 3.2.4 TGFβⅠ型受体拮抗剂SB431542显著翻转了CP大鼠的痛觉过敏 | 第34-37页 |
| 第四章 讨论 | 第37-41页 |
| 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-45页 |
| 综述 | 第45-55页 |
| 参考文献 | 第51-55页 |
| 攻读硕士学位期间公开发表的论文与会议摘要 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-58页 |
