| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 前言 | 第8-12页 |
| 英文缩略语表 | 第12-13页 |
| 材料和方法 | 第13-55页 |
| 1.1 主要仪器 | 第13-14页 |
| 1.2 主要试剂 | 第14-15页 |
| 1.3 主要试剂及配制方法 | 第15-23页 |
| 1.4 地高辛原位杂交 | 第23-32页 |
| 1.5 包装腺病毒 | 第32-38页 |
| 1.6 实验动物 | 第38-39页 |
| 1.7 蜕膜化 | 第39页 |
| 1.8 子宫基质细胞的培养 | 第39-40页 |
| 1.9 流式细胞术 | 第40-41页 |
| 1.10 普通PCR和实时定量RT-PCR | 第41-45页 |
| 1.11 组织处理、组织学分析和免疫染色 | 第45-47页 |
| 1.12 蛋白质免疫印迹 | 第47-49页 |
| 1.13 Oil red O染色 | 第49页 |
| 1.14 ChIP-QPCR | 第49-53页 |
| 1.15 细胞培养和转染及荧光素酶的测定 | 第53-54页 |
| 1.16 数据的统计分析 | 第54-55页 |
| 结果与分析 | 第55-76页 |
| 1.1 Prx2在围植入期小鼠子宫中呈现动态的时空表达模式 | 第55-56页 |
| 1.2 Prx2和蜕膜化标志性分子Dtprp的表达模式呈现互补性 | 第56-57页 |
| 1.3 Prx2在人工诱导蜕膜化子宫中的表达 | 第57-58页 |
| 1.4 Prx2在体外诱导蜕膜化的基质细胞中的表达 | 第58-61页 |
| 1.5 Prx2在体外诱导蜕膜化基质细胞中的定位 | 第61页 |
| 1.6 Prx2 ADV在体外诱导蜕膜化细胞中过表达效率的检测 | 第61-62页 |
| 1.7 Prx2的过表达影响子宫基质细胞蜕膜化过程中的细胞分化 | 第62-65页 |
| 1.8 体外培养基质细胞中过表达Prx2后蜕膜化相关基因的表达变化 | 第65-66页 |
| 1.9 Prx2的过表达导致体外培养子宫基质细胞中的脂肪滴增多 | 第66页 |
| 1.10 Prx2的过表达导致体外培养子宫基质细胞中甘油三酯水解酶Atgl和脂肪酸 β-氧化酶Cpt1a的表达下调 | 第66-69页 |
| 1.11 核转录因子Prx2直接调控甘油三酯水解的限速酶Atgl的转录 | 第69页 |
| 1.12 小鼠体内过表达Prx2亦可抑制子宫蜕膜化的发生 | 第69-70页 |
| 1.13 Prx2的过表达导致小鼠子宫基质细胞中甘油三酯水解酶Atgl的表达下调 | 第70-76页 |
| 讨论 | 第76-82页 |
| 结论 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 综述 | 第92-118页 |
| 参考文献 | 第108-118页 |
