| 中文摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 缩略语 | 第15-16页 |
| 前言 | 第16-19页 |
| 研究现状、成果 | 第16-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-19页 |
| 实验材料和方法 | 第19-36页 |
| 1.1 实验材料 | 第19-23页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第19页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第19-20页 |
| 1.1.3 所用药品和试剂 | 第20-22页 |
| 1.1.4 主要试剂的配制 | 第22-23页 |
| 1.2 实验方法 | 第23-36页 |
| 1.2.1 大鼠模型的制备以及分组 | 第23-24页 |
| 1.2.2 心肌组织的取材以及保存方法 | 第24页 |
| 1.2.3 鼠尾动脉血压、心率的测定 | 第24-25页 |
| 1.2.4 HE染色检测心肌肥厚的组织学变化 | 第25-26页 |
| 1.2.5 实时荧光定量PCR法检测相应肥厚因子以及LSD1的表达情况 | 第26-27页 |
| 1.2.6 Western blot检测LSD1、下游四种组蛋白表达情况 | 第27-30页 |
| 1.2.7 免疫组化验证LSD1与下游四种组蛋白表达情况 | 第30-31页 |
| 1.2.8 免疫荧光法检测LSD1与下游四种组蛋白表达情况 | 第31-32页 |
| 1.2.9 质粒构建 | 第32-36页 |
| 结果 | 第36-58页 |
| 2.1 腹腔注射LSD1特异性抑制剂OGL002对心肌肥厚的影响 | 第36-45页 |
| 2.1.1 心率和血压 | 第36-37页 |
| 2.1.2 各组大鼠心脏表型变化以及心重比 | 第37-38页 |
| 2.1.3 心肌肥厚的组织学变化 | 第38页 |
| 2.1.4 实时荧光定量PCR检测肥厚因子以及LSD1的表达 | 第38-40页 |
| 2.1.5 Western blot检测LSD1蛋白以及其作用下游蛋白的表达情况 | 第40-41页 |
| 2.1.6 免疫组化检测测LSD1蛋白以及其作用下游蛋白的表达情况 | 第41-42页 |
| 2.1.7 免疫荧光检测LSD1蛋白以及其作用下游蛋白的表达情况 | 第42-45页 |
| 2.2 心室注射LSD1基因特异性过表达浓缩病毒对心肌肥厚的影响 | 第45-54页 |
| 2.2.1 心率和血压 | 第45-46页 |
| 2.2.2 各组大鼠心脏表型变化以及心重比 | 第46页 |
| 2.2.3 心肌肥厚的组织学变化 | 第46-47页 |
| 2.2.4 qPCR检测三种肥厚因子的表达情况以及LSD1的表达 | 第47-48页 |
| 2.2.5 Western blot检测LSD1蛋白以及其作用下游蛋白的表达情况 | 第48-49页 |
| 2.2.6 免疫组化检测测LSD1蛋白以及其作用下游蛋白的表达情况 | 第49-51页 |
| 2.2.7 免疫荧光检测LSD1蛋白以及其作用下游蛋白的表达情况 | 第51-54页 |
| 2.3 质粒构建 | 第54-58页 |
| 2.3.1 Lenti-pCDH-CMV-puro-VECTOR质粒图谱以及SET domain区域示意图 | 第54-55页 |
| 2.3.2 EZH2/EZH2-set1-Lenti-pCDH-CMV-puro-VECTOR重组质粒的酶切鉴定结果 | 第55页 |
| 2.3.3 质粒测序 | 第55-56页 |
| 2.3.4 Western blot检测EZH2以及H3K27me3蛋白在293T细胞中表达 | 第56-57页 |
| 2.3.5 RT-PCR法检测EZH2 mRNA在 293T细胞中的表达 | 第57-58页 |
| 讨论 | 第58-64页 |
| 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-71页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第71-72页 |
| 综述 | 第72-81页 |
| 综述参考文献 | 第77-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 个人简历 | 第82页 |
