摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第一章 绪论 | 第12-26页 |
1.1 mRNA检测成像 | 第12-14页 |
1.1.1 mRNA检测成像的重要性 | 第12-13页 |
1.1.2 mRNA检测成像的传统方法 | 第13-14页 |
1.2 mRNA纳米传感器 | 第14-15页 |
1.3 四面体DNA纳米结构 | 第15-17页 |
1.3.1 DNA纳米技术 | 第15-16页 |
1.3.2 DNA四面体的研究进展 | 第16-17页 |
1.4 中枢神经细胞的成像标记 | 第17-19页 |
本课题的提出 | 第19-20页 |
参考文献 | 第20-26页 |
第二章 DNA四面体的合成以及体外细胞摄取研究 | 第26-42页 |
2.1 引言 | 第26-27页 |
2.2 试剂与仪器 | 第27-28页 |
2.2.1 试剂 | 第27页 |
2.2.2 仪器 | 第27-28页 |
2.3 实验方法 | 第28-32页 |
2.3.1 溶液的配置 | 第28页 |
2.3.2 DNA引物单链的定量 | 第28-29页 |
2.3.3 DNA四面体的组装合成 | 第29页 |
2.3.4 DNA四面体的电泳表征及AFM表征 | 第29-30页 |
2.3.5 DNA四面体的液相分离 | 第30页 |
2.3.6 原代神经元的培养及鉴定 | 第30-31页 |
2.3.7 体外细胞摄取实验 | 第31-32页 |
2.3.8 激光共聚焦显微成像 | 第32页 |
2.4 结果与分析 | 第32-37页 |
2.4.1 DNA四面体的合成与表征 | 第32-33页 |
2.4.2 DNA四面体的液相分离 | 第33-34页 |
2.4.3 原代神经元培养及鉴定 | 第34-35页 |
2.4.4 DNA四面体在Hela和PC12细胞的摄取研究 | 第35-36页 |
2.4.5 DNA四面体在海马神经元的摄取研究 | 第36-37页 |
本章小结 | 第37-38页 |
参考文献 | 第38-42页 |
第三章 DNA四面体在中枢神经组织中的摄取研究 | 第42-61页 |
3.1 引言 | 第42-43页 |
3.2 试剂与仪器 | 第43-44页 |
3.2.1 试剂 | 第43页 |
3.2.2 仪器 | 第43-44页 |
3.3 实验方法 | 第44-46页 |
3.3.1 玻璃电极的制备 | 第44页 |
3.3.2 小鼠脑组织压力注射DNA四面体 | 第44-45页 |
3.3.3 小鼠脑组织电转DNA四面体 | 第45页 |
3.3.4 小鼠灌流以及组织后固定 | 第45页 |
3.3.5 脑组织切片的制备及荧光观察 | 第45-46页 |
3.4 结果分析 | 第46-55页 |
3.4.1 小鼠组织压力注射DNA四面体的研究 | 第46-50页 |
3.4.2 小鼠组织电转DNA四面体的研究 | 第50-51页 |
3.4.3 小鼠组织中DNA四面体结构完整性的研究 | 第51-55页 |
3.5 本章小结 | 第55-57页 |
参考文献 | 第57-61页 |
第四章 基于DNA四面体的mRNA探针的构建以及功能应用 | 第61-81页 |
4.1 引言 | 第61-62页 |
4.2 试剂与仪器 | 第62-63页 |
4.2.1 试剂 | 第62页 |
4.2.2 仪器 | 第62-63页 |
4.3 实验方法 | 第63-66页 |
4.3.1 DNA引物单链的定量 | 第63页 |
4.3.2 TDNs-flare的组装以及结构表征 | 第63-64页 |
4.3.3 TDNs-flare的液相色谱分离 | 第64页 |
4.3.4 TDNs-flare的体外检测 | 第64-65页 |
4.3.5 小鼠脑组织液压注射以及电转TDNs-flare | 第65页 |
4.3.6 小鼠灌流以及组织后固定 | 第65页 |
4.3.7 脑组织切片的制备及荧光观察 | 第65-66页 |
4.4 结果分析 | 第66-77页 |
4.4.1 TDNs-flare结构的设计及组装 | 第66-67页 |
4.4.2 mRNA的选择以及探针的筛选 | 第67-70页 |
4.4.3 TDNs-flare的结构电泳表征及液相色谱分离 | 第70-71页 |
4.4.4 TDNs-flare的体外检测 | 第71-73页 |
4.4.5 TDNs-flare在组织体内的检测成像 | 第73-77页 |
4.5 本章小结 | 第77-78页 |
参考文献 | 第78-81页 |
攻读硕士期间已发表和待发表论文 | 第81-82页 |
致谢 | 第82页 |