| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 文献综述 | 第10-20页 |
| 1.1 我国黄海鱼类寄生线虫的分类学研究历史 | 第10-15页 |
| 1.1.1 旋尾目Spirurida | 第12-13页 |
| 1.1.2 蛔目Ascaridida | 第13-15页 |
| 1.2 鱼类寄生线虫病研究进展 | 第15-17页 |
| 1.2.1 旋尾线虫病 | 第15-16页 |
| 1.2.2 异尖线虫病 | 第16-17页 |
| 1.3 现代分子技术在线虫分类中的应用 | 第17-20页 |
| 1.3.1 等位酶模式分析 | 第17页 |
| 1.3.2 限制性内切酶片段长度多态性(RFLP) | 第17-18页 |
| 1.3.3 随机扩增多态性DNA (RAPD) | 第18页 |
| 1.3.4 扩增片段长度多态性(AFLP) | 第18页 |
| 1.3.5 单链构象多态性检测(SSCP) | 第18-19页 |
| 1.3.6 核酸序列分析技术 | 第19页 |
| 1.3.7 DNA条形码技术 | 第19-20页 |
| 2 前言 | 第20页 |
| 3 材料和方法 | 第20-29页 |
| 3.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 3.1.1 实验用线虫材料来源 | 第20-21页 |
| 3.1.2 海洋鱼类鉴定所依据的著作 | 第21页 |
| 3.2 实验试剂 | 第21页 |
| 3.3 实验仪器 | 第21-22页 |
| 3.4 实验方法 | 第22-27页 |
| 3.4.1 线虫标本的采集 | 第22页 |
| 3.4.2 光镜下线虫的形态研究 | 第22-23页 |
| 3.4.3 扫描电镜样品的制备及观察 | 第23-24页 |
| 3.4.4 线虫DNA的提取 | 第24页 |
| 3.4.5 核基因ITS序列的扩增 | 第24-25页 |
| 3.4.6 琼脂糖凝胶电泳 | 第25页 |
| 3.4.7 克隆测序 | 第25-26页 |
| 3.4.8 DNA序列分析 | 第26-27页 |
| 3.5 线虫各物种用于DNA分析材料的选取 | 第27-28页 |
| 3.5.1 内弯宫脂线虫Hysterothylacium aduncum用于ITS序列分析的标本 | 第27页 |
| 3.5.2 狮子鱼宫脂线虫Hysterothylacium liparis用于ITS序列分析的标本 | 第27-28页 |
| 3.5.3 费氏宫脂线虫Hysterothylacium fabri用于ITS序列分析的标本 | 第28页 |
| 3.5.4 派氏异尖线虫Anisakis pegreffii用于ITS序列分析的标本 | 第28页 |
| 3.6 各个宿主感染线虫强度和感染率的统计 | 第28-29页 |
| 4 结果与讨论 | 第29-104页 |
| 4.1 山东新蛇线线虫Neoascarophis shandongensis sp. nov. (图 1–2) | 第29-40页 |
| 4.2 内弯宫脂线虫Hysterothylacium aduncum (Rudolphi, 1802) (图 3–4) | 第40-66页 |
| 4.3 狮子鱼宫脂线虫Hysterothylacium liparis Li, Xu & Zhang, 2007 (图 7–8) | 第66-90页 |
| 4.4 费氏宫脂线虫三期幼虫Third-stage larva of Hysterothylacium fabri(Rudolphi, 1819) (图 9) | 第90-94页 |
| 4.5 派氏异尖线虫三期幼虫Third-stage larva of Anisakis pegreffiiCampana-Rouget & Biocca, 1955 (图 10–11) | 第94-104页 |
| 5 结论 | 第104-105页 |
| 参考文献 | 第105-114页 |
| 后记（含致谢） | 第114页 |
