| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略语/符号说明 | 第9-10页 |
| 前言 | 第10-14页 |
| 研究现状、成果 | 第10-12页 |
| 研究目的、方法 | 第12-14页 |
| 一、Nano-HA/COL/SF复合三维多孔支架的制备 | 第14-28页 |
| 1.1 对象和方法 | 第14-17页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第14页 |
| 1.1.2 实验方法 | 第14-16页 |
| 1.1.3 孔隙率、孔径大小等理化性能检测 | 第16-17页 |
| 1.1.4 三维支架的生物力学检测 | 第17页 |
| 1.1.5 统计学方法 | 第17页 |
| 1.2 结果 | 第17-24页 |
| 1.2.1 Nano-HA/COL/SF复合三维支架吸水膨胀率结果 | 第17-18页 |
| 1.2.2 Nano-HA/COL/SF复合三维支架孔隙率结果 | 第18页 |
| 1.2.3 Nano-HA/COL/SF复合三维支架物理大体外观 | 第18页 |
| 1.2.4 Nano-HA/COL/SF复合三维支架孔径大小及微观结构 | 第18-19页 |
| 1.2.5 Nano-HA/COL/SF复合三维支架的生物力学测试结果 | 第19-24页 |
| 1.3 讨论 | 第24-27页 |
| 1.3.1 支架材料复合的必要性 | 第24-25页 |
| 1.3.2 支架材料制备的方法 | 第25-26页 |
| 1.3.3 组织工程支架评价指标 | 第26-27页 |
| 1.4 小结 | 第27-28页 |
| 二、大鼠BMSCs细胞的提取培养及成骨方向诱导 | 第28-38页 |
| 2.1 对象和方法 | 第28-31页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第28-29页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第29-30页 |
| 2.1.3 BMSCs诱导后检测其成骨性 | 第30-31页 |
| 2.1.4 统计学方法 | 第31页 |
| 2.2 结果 | 第31-35页 |
| 2.2.1 细胞形态变化观察 | 第31页 |
| 2.2.2 碱性磷酸酶（ALP）染色结果 | 第31页 |
| 2.2.3 茜素红钙结节染色 | 第31页 |
| 2.2.4 I型胶原蛋白Western blotting结果 | 第31页 |
| 2.2.5 骨钙素检测结果 | 第31-35页 |
| 2.3 讨论 | 第35-37页 |
| 2.3.1 种子细胞的选择与诱导 | 第35-36页 |
| 2.3.2 BMSCs细胞诱导后鉴定结果的讨论 | 第36-37页 |
| 2.4 小结 | 第37-38页 |
| 三、成骨诱导细胞与支架复合培养及检测 | 第38-44页 |
| 3.1 对象和方法 | 第38-39页 |
| 3.1.1 实验对象 | 第38页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第38-39页 |
| 3.1.3 统计学方法 | 第39页 |
| 3.2 结果 | 第39-42页 |
| 3.2.1 MTT法检测细胞增殖结果 | 第39-40页 |
| 3.2.2 电镜扫描及HE切片结果 | 第40-42页 |
| 3.3 讨论 | 第42-43页 |
| 3.3.1 组织工程构建方式的讨论 | 第42页 |
| 3.3.2 用于检测细胞-支架培养情况指标的讨论 | 第42-43页 |
| 3.4 小结 | 第43-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-56页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第56-58页 |
| 综述 组织工程骨研究背景与进展 | 第58-67页 |
| 综述参考文献 | 第65-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
