| 中文摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 符号说明 | 第10-11页 |
| 文献综述 | 第11-27页 |
| 1 VEGF/VEGFR信号对血管生成的调控 | 第11-14页 |
| 1.1 VEGF/VEGFR信号及相关作用 | 第11-12页 |
| 1.2 VEGF/VEGFR信号在内皮细胞中的作用 | 第12-13页 |
| 1.3 VEGF/VEGFR信号在血管生成中的作用 | 第13页 |
| 1.4 VEGF/VEGFR信号在肿瘤血管生成中的作用 | 第13-14页 |
| 2 PLCγ/PKC信号通路及在血管生成中的作用 | 第14-18页 |
| 2.1 PLCγ/PKC信号通路组成及活化 | 第14-15页 |
| 2.2 PLCγ/PKC信号通路促进细胞增殖 | 第15-16页 |
| 2.3 PLCγ/PKC信号通路抑制细胞凋亡 | 第16页 |
| 2.4 PLCγ/PKC信号通路促进细胞迁移 | 第16-17页 |
| 2.5 PLCγ/PKC信号通路促进血管通透性 | 第17页 |
| 2.6 PLCγ/PKC信号通路对肿瘤血管的影响 | 第17-18页 |
| 3 砷化合物在血管生成中的作用 | 第18-20页 |
| 3.1 无机砷对血管生成的双重作用 | 第18页 |
| 3.2 有机砷对血管生成的作用 | 第18-20页 |
| 参考文献 | 第20-27页 |
| 第一章 PLCγ/PKC信号通路在洛克沙胂促体外内皮细胞及血管生成中的作用 | 第27-44页 |
| 1 材料 | 第27-30页 |
| 1.1 实验动物及试剂 | 第27-28页 |
| 1.2 主要仪器 | 第28页 |
| 1.3 试验试剂 | 第28-30页 |
| 2 方法 | 第30-33页 |
| 2.1 大鼠原代血管内皮细胞的培养 | 第30页 |
| 2.2 PLCγ/PKC信号通路在洛克沙胂促血管内皮细胞生长中的作用 | 第30-31页 |
| 2.3 划痕试验检测细胞迁移能力 | 第31-32页 |
| 2.4 管形成试验检测细胞管状形成的能力 | 第32页 |
| 2.5 Western Blot检测PLCγ、PKC蛋白表达水平 | 第32页 |
| 2.6 统计分析 | 第32-33页 |
| 3 结果 | 第33-40页 |
| 3.1 洛克沙胂及信号蛋白抑制剂对内皮细胞活力的影响 | 第33页 |
| 3.2 洛克沙胂及信号蛋白抑制剂对内皮细胞增殖的影响 | 第33-35页 |
| 3.3 洛克沙胂及信号蛋白抑制剂对内皮细胞迁移的影响 | 第35-37页 |
| 3.4 洛克沙胂及信号蛋白抑制剂对内皮细胞管形成的影响 | 第37页 |
| 3.5 洛克沙胂及信号蛋白抑制剂对PLCγ、PKC蛋白表达的影响 | 第37-40页 |
| 4 结论与讨论 | 第40-43页 |
| 参考文献 | 第43-44页 |
| 第二章 PLCγ/PKC信号通路在洛克沙胂促小鼠移植瘤血管生成中的作用 | 第44-57页 |
| 1 材料 | 第44-46页 |
| 1.1 仪器 | 第44-45页 |
| 1.2 药品与试剂 | 第45页 |
| 1.3 主要试剂配置 | 第45页 |
| 1.4 实验动物 | 第45-46页 |
| 2 方法 | 第46-48页 |
| 2.1 B16细胞的培养 | 第46页 |
| 2.2 小鼠黑色素瘤模型的建立 | 第46页 |
| 2.3 剂量分组 | 第46页 |
| 2.4 肿瘤体积和重量的测量 | 第46页 |
| 2.5 肿瘤组织病理学检查 | 第46-47页 |
| 2.6 CD31免疫组化检测肿瘤血管状况 | 第47页 |
| 2.7 Western Blot检测PLCγ、PKC蛋白的表达 | 第47页 |
| 2.8 统计分析 | 第47-48页 |
| 3 结果 | 第48-53页 |
| 3.1 小鼠B16移植瘤模型的建立 | 第48页 |
| 3.2 不同处理对小鼠生长的影响 | 第48页 |
| 3.3 不同处理对小鼠肿瘤生长的影响 | 第48-49页 |
| 3.4 不同处理组瘤组织HE染色分析 | 第49页 |
| 3.5 肿瘤组织CD31免疫组化分析 | 第49-51页 |
| 3.6 不同处理对肿瘤组织中PLCγ、PKC蛋白表达的影响 | 第51-53页 |
| 4 结论与讨论 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-57页 |
| 全文结论 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
