中文摘要 | 第8-10页 |
ABSTRACT | 第10-11页 |
符号说明 | 第12-13页 |
第一章 绪论 | 第13-29页 |
1.1 引言 | 第13页 |
1.2 芳香烃受体研究进展 | 第13-27页 |
1.2.1 芳香烃受体的分子结构 | 第15-16页 |
1.2.2 芳香烃受体的配体 | 第16-18页 |
1.2.3 芳香烃受体的活化及转录激活 | 第18-20页 |
1.2.4 芳香烃受体活性的负调节机制 | 第20-21页 |
1.2.5 芳香烃受体的生物学功能 | 第21-27页 |
1.2.5.1 芳香烃受体与抗氧化 | 第21-22页 |
1.2.5.2 芳香烃受体与免疫 | 第22-23页 |
1.2.5.3 芳香烃受体与癌症 | 第23-25页 |
1.2.5.4 芳香烃受体与肝脏损伤 | 第25-27页 |
1.3 纳米颗粒对芳香烃受体下游基因表达的影响 | 第27-28页 |
1.4 本研究工作的意义 | 第28-29页 |
第二章 纳米颗粒对芳香烃受体信号通路干扰作用的初步筛查 | 第29-41页 |
2.1 引言 | 第29-30页 |
2.2 实验材料与仪器 | 第30-31页 |
2.2.1 实验材料 | 第30页 |
2.2.2 实验仪器 | 第30-31页 |
2.3 实验方法 | 第31-34页 |
2.3.1 细胞培养 | 第31-32页 |
2.3.1.1 CBG2.8D细胞复苏 | 第31-32页 |
2.3.1.2 CBG2.8D细胞传代 | 第32页 |
2.3.1.3 CBG2.8D细胞冻存 | 第32页 |
2.3.2 细胞毒性实验 | 第32-33页 |
2.3.3 AhR依赖荧光素酶报告基因表达的检测 | 第33-34页 |
2.3.3.1 样品的暴露 | 第33-34页 |
2.3.3.2 报告基因表达的检测 | 第34页 |
2.4 结果与讨论 | 第34-39页 |
2.4.1 纳米颗粒的表征 | 第34-36页 |
2.4.2 纳米颗粒对CBG2.8D细胞活性的影响 | 第36-37页 |
2.4.3 纳米颗粒对重组细胞荧光素酶表达活性的影响 | 第37-39页 |
2.5 结论 | 第39-41页 |
第三章 羧基化多壁碳纳米管对芳香烃受体信号通路干扰作用机制的初步研究 | 第41-63页 |
3.1 引言 | 第41页 |
3.2 实验材料与仪器 | 第41-42页 |
3.2.1 实验材料 | 第41-42页 |
3.2.2 实验仪器 | 第42页 |
3.3 实验方法 | 第42-48页 |
3.3.1 MWCNTs-COOH的合成 | 第42页 |
3.3.2 MWCNTs-COOH的表征 | 第42-43页 |
3.3.2.1 TEM表征MWCNTs-COOH的形貌 | 第43页 |
3.3.3 细胞培养 | 第43页 |
3.3.4 细胞毒性实验 | 第43页 |
3.3.5 AhR依赖荧光素酶报告基因表达的检测 | 第43页 |
3.3.6 反转录实时定量荧光PCR(qRT-PCR)分析 | 第43-46页 |
3.3.6.1 细胞总RNA提取和cDNA合成 | 第43-45页 |
3.3.6.2 qPCR分析 | 第45-46页 |
3.3.7 细胞内总ROS的检测 | 第46页 |
3.3.8 免疫印迹分析实验 | 第46-48页 |
3.4 结果与讨论 | 第48-61页 |
3.4.1 MWCNTs-COOH的表征 | 第48页 |
3.4.1.1 TEM对MWCNTs-COOH尺寸和形貌的表征 | 第48页 |
3.4.2 MWCNTs-COOH对HepaWT和其重组细胞CBG2.8D活性的影响 | 第48-50页 |
3.4.3 MWCNTs-COOH抑制CBG2.8D细胞中DRE荧光素酶的表达 | 第50-51页 |
3.4.4 MWCNTs-COOH抑制HepaWT细胞中TCDD诱导的CYP1A1的表达 | 第51-52页 |
3.4.5 MWCNTs-COOH对AhR和Amt基因和蛋白表达水平的影响 | 第52-54页 |
3.4.6 MEK-ERK通路参与MWCNTs-COOH对AhR信号通路的抑制 | 第54-57页 |
3.4.7 ROS不介导MWCNTs-COOH对AhR信号通路的抑制 | 第57-59页 |
3.4.8 抑制MWCNTs-COOH的摄入部分减弱了CYP1A1的下调 | 第59-61页 |
3.5 结论 | 第61-63页 |
参考文献 | 第63-75页 |
致谢 | 第75-76页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第76-77页 |
学位论文评阅及答辩情况表 | 第77页 |