| 中文摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 1 前言 | 第12-28页 |
| ·子宫 | 第12-14页 |
| ·子宫的结构 | 第12-13页 |
| ·子宫腺与胚胎着床 | 第13-14页 |
| ·胚胎着床 | 第14-15页 |
| ·支配子宫的植物性神经研究 | 第15-17页 |
| ·神经系统功能 | 第15页 |
| ·植物性神经系统及其阻断剂 | 第15-16页 |
| ·植物性神经系统与胚胎着床 | 第16-17页 |
| ·Vimentin | 第17-20页 |
| ·Vimentin的结构组成 | 第17-18页 |
| ·Vimentin生理功能 | 第18-20页 |
| ·Vimentin与胚胎发育和胚胎着床 | 第18页 |
| ·Vimentin与血管生成 | 第18页 |
| ·Vimentin维持细胞的形态 | 第18页 |
| ·Vimentin影响细胞粘附和迁移 | 第18-19页 |
| ·Vimentin参与细胞信号转导 | 第19页 |
| ·Vimentin调节细胞凋亡 | 第19-20页 |
| ·经典Wnt信号通路（Wnt/β-catenin通路） | 第20-27页 |
| ·Wnt基因 | 第20页 |
| ·Wnt信号通路 | 第20-21页 |
| ·Wnt/β-catenin信号通路与生长发育 | 第21-22页 |
| ·Wnt7a研究现状 | 第22-23页 |
| ·Wnt信号通路的抑制蛋白：DKK-1 | 第23-24页 |
| ·Wnt信号通路的抑制蛋白：DKK-3 | 第24-27页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第27-28页 |
| 2 材料与方法 | 第28-35页 |
| ·试验材料 | 第28-29页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第28-29页 |
| ·试验动物 | 第29页 |
| ·发情规律观察 | 第29-30页 |
| ·免疫组织化学方法检测子宫Vimentin和Wnt7a阳性分布 | 第30-31页 |
| ·切片标本制备 | 第30页 |
| ·HE染色 | 第30页 |
| ·免疫组织化学方法的具体步骤 | 第30-31页 |
| ·免疫组织化学方法结果统计 | 第31页 |
| ·实时荧光定量法测定Vimentin和Wnt7a的mRNA相对表达量 | 第31-35页 |
| ·总RNA的提取 | 第31-32页 |
| ·总RNA质量鉴定 | 第32页 |
| ·引物设计及RT-PCR扩增 | 第32-35页 |
| ·引物的设计合成 | 第32-33页 |
| ·反转录反应 | 第33页 |
| ·RT-PCR产物的分析 | 第33-34页 |
| ·RT-PCR结果统计 | 第34-35页 |
| 3 实验结果 | 第35-51页 |
| ·大鼠子宫着床点变化 | 第35-36页 |
| ·植物性神经损毁对子宫组织结构的影响 | 第36-40页 |
| ·神经损毁对大鼠子宫腔上皮的影响 | 第36-37页 |
| ·神经损毁对大鼠子宫腺管的影响 | 第37-39页 |
| ·神经损毁对大鼠子宫血管的影响 | 第39-40页 |
| ·Vimentin免疫阳性细胞在子宫内的分布规律 | 第40-44页 |
| ·Vimentin免疫阳性细胞在子宫内的分布规律 | 第40-43页 |
| ·Vimentin免疫阳性细胞光密度测定 | 第43-44页 |
| ·Vimentin mRNA在大鼠子宫中的表达情况 | 第44-46页 |
| ·总RNA质量检测 | 第44页 |
| ·Vimentin mRNA表达的变化 | 第44-46页 |
| ·Wnt7a免疫阳性细胞在大鼠子宫中的表达情况 | 第46-51页 |
| ·Wnt7a在子宫腔上皮的分布特点 | 第47-48页 |
| ·Wnt7a在子宫腺上皮的分布特点 | 第48-49页 |
| ·Wnt7a m RNA表达的变化 | 第49-51页 |
| 4 讨论 | 第51-54页 |
| 5 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
