| 中文摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一部分 文献综述 | 第10-24页 |
| 1 子宫与蜕膜 | 第10-15页 |
| ·子宫 | 第10-11页 |
| ·蜕膜化过程 | 第11页 |
| ·蜕膜的分子调控 | 第11-13页 |
| ·蜕膜的功能 | 第13-15页 |
| 2 子痫前期 | 第15-18页 |
| ·子痫前期的诊断标准 | 第15-16页 |
| ·子痫前期的可能发病机理 | 第16-18页 |
| 3 WNT 研究现状 | 第18-21页 |
| ·WNT 信号通路 | 第18-19页 |
| ·WNT4 及 WNT5A | 第19-21页 |
| 4 研究思路及意义 | 第21-24页 |
| ·研究背景 | 第21-22页 |
| ·研究内容 | 第22页 |
| ·研究思路 | 第22-23页 |
| ·研究意义 | 第23-24页 |
| 第二部分 实验研究 | 第24-55页 |
| 第一章 SPE 组与 NP 组的产妇信息比较 | 第24-27页 |
| 1 蜕膜组织标本的采集及处理 | 第24页 |
| ·组织采集 | 第24页 |
| ·组织处理 | 第24页 |
| 2 研究对象的选择及分组 | 第24-25页 |
| 3 结果 | 第25页 |
| 4 讨论 | 第25-27页 |
| 第二章 WNT4 及 WNT5A 在蜕膜组织中的表达分布 | 第27-32页 |
| 1 实验材料与方法 | 第27-30页 |
| ·实验仪器及试剂 | 第27-28页 |
| ·冰冻切片及免疫组化步骤 | 第28-30页 |
| 2 实验结果 | 第30-31页 |
| 3 讨论 | 第31-32页 |
| 第三章 SPE、NP 组中 WNT4 和 WNT5A 在 mRNA 及蛋白水平的表达变化 | 第32-42页 |
| 1 实验材料与方法 | 第32-39页 |
| ·实验仪器及试剂 | 第32-35页 |
| ·组织全蛋白提取及 Western blot 实验步骤 | 第35-37页 |
| ·组织 RNA 提取及 Real-Time PCR 步骤 | 第37-39页 |
| 2 实验结果 | 第39-41页 |
| ·Real-Time PCR 实验结果 | 第39-40页 |
| ·Western blot 实验结果 | 第40-41页 |
| 3 讨论 | 第41-42页 |
| 第四章 WNT4 和 WNT5A 在 hESCs 诱导蜕膜化后的表达变化 | 第42-51页 |
| 1 实验材料与方法 | 第42-46页 |
| ·实验仪器及试剂 | 第42页 |
| ·hESCs 培养及诱导分化 | 第42-44页 |
| ·细胞全蛋白提取及 Western blot 实验步骤 | 第44页 |
| ·细胞总 RNA 提取及 Real-time PCR 步骤 | 第44-46页 |
| 2 实验结果 | 第46-49页 |
| ·hESCs 诱导蜕膜化 | 第46-48页 |
| ·Real-Time PCR 实验结果 | 第48-49页 |
| ·Western blot 实验结果 | 第49页 |
| 3 讨论 | 第49-51页 |
| 第五章 分别干扰 WNT4 和 WNT5A 表达后对蜕膜化的影响 | 第51-55页 |
| 1 实验材料与方法 | 第51-52页 |
| ·实验仪器及试剂 | 第51页 |
| ·hESCs 培养及诱导分化 | 第51页 |
| ·细胞转染 | 第51页 |
| ·细胞总 RNA 提取及 Real-time PCR 步骤 | 第51-52页 |
| 2 实验结果 | 第52-53页 |
| 3 讨论 | 第53-55页 |
| 小结 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
