农杆菌侵染法介导抗逆基因APX的旱稻转化
| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 目录 | 第6-9页 |
| 第1章 绪论 | 第9-19页 |
| ·旱稻 | 第9-11页 |
| ·旱稻的抗旱形态与生理特性 | 第9-10页 |
| ·旱稻的根系特征 | 第10页 |
| ·发展旱稻生产的意义 | 第10-11页 |
| ·杂草控制 | 第11页 |
| ·APX 简介 | 第11-14页 |
| ·APX 同工酶 | 第11-12页 |
| ·APX 抗氧化胁迫的机制 | 第12-13页 |
| ·APX 研究进展 | 第13-14页 |
| ·植物遗传转化方法 | 第14-16页 |
| ·基因枪法 | 第14页 |
| ·农杆菌转化法 | 第14-15页 |
| ·电击法 | 第15-16页 |
| ·花粉管通道法 | 第16页 |
| ·课题来源 | 第16页 |
| ·课题研究目的和内容 | 第16-19页 |
| ·研究目的 | 第16页 |
| ·研究内容 | 第16-19页 |
| 第2章 旱稻愈伤组织的获得 | 第19-31页 |
| ·概述 | 第19-20页 |
| ·试验材料、试剂及设备 | 第20-22页 |
| ·实验材料 | 第20页 |
| ·实验设备 | 第20页 |
| ·试剂 | 第20-22页 |
| ·实验方法 | 第22-27页 |
| ·主要培养基母液成分及配制 | 第22-26页 |
| ·愈伤组织诱导培养基的配制 | 第26-27页 |
| ·种子灭菌与接种 | 第27页 |
| ·愈伤组织诱导结果 | 第27-28页 |
| ·讨论 | 第28页 |
| ·本章小结 | 第28-31页 |
| 第3章 农杆菌介导的旱稻转化 | 第31-39页 |
| ·概述 | 第31页 |
| ·实验材料、试剂与设备 | 第31-35页 |
| ·实验材料 | 第31-32页 |
| ·实验试剂及设备 | 第32页 |
| ·实验设备与仪器 | 第32页 |
| ·培养基的配制 | 第32-35页 |
| ·实验方法 | 第35-36页 |
| ·旱稻愈伤组织继代 | 第35页 |
| ·农杆菌培养 | 第35页 |
| ·农杆菌活化 | 第35页 |
| ·农杆菌侵染旱稻愈伤组织 | 第35-36页 |
| ·所用公式 | 第36页 |
| ·结果 | 第36-37页 |
| ·OD600值对旱稻基因转化的影响 | 第36-37页 |
| ·侵染时间对旱稻基因转化的影响 | 第37页 |
| ·共培养温度对转化效果的影响 | 第37页 |
| ·讨论 | 第37-38页 |
| ·本章小结 | 第38-39页 |
| 第4章 筛选与分化 | 第39-47页 |
| ·概述 | 第39页 |
| ·试验材料、试剂及设备 | 第39页 |
| ·试验材料 | 第39页 |
| ·试验试剂 | 第39页 |
| ·试验设备 | 第39页 |
| ·试验方法 | 第39-43页 |
| ·培养基的配制 | 第39-41页 |
| ·筛选压力的选择 | 第41-42页 |
| ·脱菌后恢复培养 | 第42页 |
| ·抗性愈伤组织筛选 | 第42页 |
| ·抗性愈伤组织的预分化 | 第42页 |
| ·抗性愈伤组织的分化 | 第42页 |
| ·生根培养 | 第42页 |
| ·移栽 | 第42-43页 |
| ·实验结果 | 第43-45页 |
| ·筛选压力的选择 | 第43页 |
| ·恢复培养 | 第43页 |
| ·植株再生 | 第43-45页 |
| ·讨论 | 第45页 |
| ·本章小结 | 第45-47页 |
| 第5章 转基因旱稻的分子检测 | 第47-53页 |
| ·概述 | 第47页 |
| ·试验材料、试剂及仪器 | 第47-48页 |
| ·试验材料 | 第47页 |
| ·试验试剂 | 第47页 |
| ·主要溶液配制 | 第47-48页 |
| ·主要仪器 | 第48页 |
| ·试验方法 | 第48-49页 |
| ·旱稻 DNA 的提取 | 第48页 |
| ·阳性转基因植株的筛选 | 第48-49页 |
| ·试验结果 | 第49-50页 |
| ·Actin 基因 PCR 反应结果 | 第49-50页 |
| ·目的基因 PCR 反应结果 | 第50页 |
| ·讨论 | 第50-51页 |
| ·本章小结 | 第51-53页 |
| 结论 | 第53-55页 |
| 附录 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
