| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-13页 |
| 引言 | 第13-16页 |
| 1 文献综述 | 第16-47页 |
| ·细胞凋亡与糖尿病脑病的关系 | 第16-23页 |
| ·海马、学习记忆与糖尿病脑病 | 第23-24页 |
| ·海马与学习记忆功能的关系 | 第23-24页 |
| ·糖尿病脑病学习记忆功能的改变 | 第24页 |
| ·糖尿病脑病的发病机制 | 第24-28页 |
| ·脑血管改变 | 第24-25页 |
| ·氧化应激和非酶性蛋白糖基化 | 第25页 |
| ·兴奋性氨基酸毒性与钙超载 | 第25-26页 |
| ·神经营养因子不足 | 第26页 |
| ·自由基 | 第26-28页 |
| ·糖尿病脑病模型 | 第28-31页 |
| ·实验性糖尿病动物模型 | 第28-29页 |
| ·自发性糖尿病动物模型 | 第29-30页 |
| ·转基因动物 | 第30页 |
| ·糖尿病脑病模型 | 第30-31页 |
| ·糖尿病脑病的治疗进展 | 第31-32页 |
| ·药物治疗 | 第31-32页 |
| ·桃叶珊瑚苷的研究现状 | 第32-37页 |
| ·植物抗生素 | 第33-34页 |
| ·抗病毒作用 | 第34页 |
| ·抗炎作用 | 第34-35页 |
| ·抗氧化作用及延缓衰老作用 | 第35-36页 |
| ·抗骨质疏松作用 | 第36页 |
| ·神经营养作用 | 第36页 |
| ·抗肿瘤活性研究 | 第36页 |
| ·其他活性 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-47页 |
| 2 大鼠糖尿病脑病模型的构建 | 第47-65页 |
| ·实验材料及设备 | 第47-48页 |
| ·实验材料 | 第47页 |
| ·实验设备 | 第47-48页 |
| ·实验方法 | 第48-51页 |
| ·实验动物及饲养 | 第48页 |
| ·配制试剂 | 第48页 |
| ·实验动物的筛选与行为实验 | 第48-49页 |
| ·糖尿病脑病模型的建立 | 第49页 |
| ·桃叶珊瑚苷体内药物活性确定 | 第49-50页 |
| ·桃叶珊瑚苷应用方案 | 第50页 |
| ·桃叶珊瑚苷剂量效应 | 第50页 |
| ·桃叶珊瑚苷长期给药效应 | 第50页 |
| ·脑组织的处理及准备 | 第50页 |
| ·脑组织病理染色(HE) | 第50页 |
| ·海马区存活细胞计数 | 第50-51页 |
| ·统计学方法 | 第51页 |
| ·实验结果 | 第51-61页 |
| ·糖尿病动物模型血糖、体重检测 | 第51-52页 |
| ·糖尿病脑病模型的构建 | 第52-53页 |
| ·HE染色检测观察海马CA1区神经元细胞 | 第53-55页 |
| ·桃叶珊瑚苷剂量确定 | 第55页 |
| ·桃叶珊瑚苷治疗后实验大鼠的体重、血糖检测 | 第55-56页 |
| ·行为学检测 | 第56-57页 |
| ·HE染色检测桃叶珊瑚苷对脑病鼠海马CA1神经元细胞的保护作用 | 第57-61页 |
| ·讨论 | 第61-62页 |
| ·小结 | 第62页 |
| 参考文献 | 第62-65页 |
| 3 桃叶珊瑚苷在糖尿病脑病中神经保护作用机制探讨 | 第65-87页 |
| ·实验材料及设备 | 第65-67页 |
| ·实验材料 | 第65-66页 |
| ·实验设备 | 第66-67页 |
| ·实验方法 | 第67-72页 |
| ·实验动物分组、给药及饲养 | 第67页 |
| ·海马CA1区存活神经元计数 | 第67页 |
| ·透射电镜观察海马CA1区锥体神经元超微结构 | 第67页 |
| ·原位细胞死亡检测凋亡神经元 | 第67页 |
| ·免疫组化检测Bcl-2和Bax蛋白 | 第67-68页 |
| ·组织蛋白测定 | 第68页 |
| ·考马斯亮兰法 | 第68页 |
| ·双缩脲法 | 第68页 |
| ·Western blotting检测Bcl-2和Bax两种蛋白 | 第68-69页 |
| ·超氧化物歧化酶(Superoxide Dismutase,SOD)活力 | 第69页 |
| ·谷胱甘肽过氧化物酶(Glutathione Peroxidase,GSH-PX)活力 | 第69-70页 |
| ·过氧化氢酶(Catalase,CAT)活力 | 第70页 |
| ·一氧化氮合成酶(Nitric Oxide Synthase,NOS)活力 | 第70-71页 |
| ·丙二醛(Malondialdehyde,MDA)含量 | 第71页 |
| ·统计学方法 | 第71-72页 |
| ·实验结果 | 第72-82页 |
| ·电镜下海马CA1区神经元形态 | 第72-74页 |
| ·海马CA1区存活神经元、TUNEL、Bcl-2和Bax阳性神经元计数 | 第74-76页 |
| ·桃叶珊瑚苷对大鼠海马神经元细胞Bcl-2和Bax蛋白表达的影响 | 第76-78页 |
| ·SOD、GSH-PX和CAT的活性 | 第78-79页 |
| ·MDA含量 | 第79页 |
| ·NOS活性 | 第79-82页 |
| ·讨论 | 第82-83页 |
| ·小结 | 第83页 |
| 参考文献 | 第83-87页 |
| 4 桃叶珊瑚苷对H_2O_2诱导PC12细胞凋亡的保护作用 | 第87-114页 |
| ·实验材料及设备 | 第88-89页 |
| ·实验材料 | 第88页 |
| ·实验设备 | 第88-89页 |
| ·实验方法 | 第89-91页 |
| ·PC12细胞培养 | 第89页 |
| ·H_2O_2对PC12细胞的损伤 | 第89页 |
| ·H_2O_2对PC12细胞的损伤周期检测 | 第89页 |
| ·H_2O_2对PC12细胞的损伤形态学的观察 | 第89页 |
| ·H_2O_2对PC12细胞的损伤透射电镜观察 | 第89-90页 |
| ·桃叶珊瑚苷对正常PC12细胞的毒性检测 | 第90页 |
| ·桃叶珊瑚苷抑制H_2O_2对PC12细胞损伤的细胞活力检测 | 第90页 |
| ·桃叶珊瑚苷抑制H_2O_2对PC12细胞损伤的形态学观察 | 第90页 |
| ·桃叶珊瑚苷抑制H_2O_2对PC12细胞损伤的超微结构观察 | 第90页 |
| ·桃叶珊瑚苷抑制H_2O_2对PC12细胞损伤的细胞周期检测 | 第90页 |
| ·蛋白质提取及分离 | 第90页 |
| ·Western blotting | 第90-91页 |
| ·乳酸脱氢酶(Lactate Dehydrogenase,LDH)的释放 | 第91页 |
| ·caspase-3分析活性 | 第91页 |
| ·统计方法 | 第91页 |
| ·实验结果 | 第91-107页 |
| ·H_2O_2引起PC12细胞损伤的时间和剂量关系 | 第91-92页 |
| ·H_2O_2对细胞周期的影响 | 第92-94页 |
| ·Hoechst 33258染色观察H_2O_2诱导PC12细胞凋亡 | 第94页 |
| ·透射电镜观察H_2O_2诱导PC12细胞凋亡 | 第94-95页 |
| ·桃叶珊瑚苷的细胞毒性检测 | 第95-96页 |
| ·桃叶珊瑚苷抑制H_2O_2诱导PC12细胞凋亡细胞活力检测 | 第96-97页 |
| ·桃叶珊瑚苷抑制H_2O_2诱导PC12细胞凋亡形态学观察 | 第97-98页 |
| ·桃叶珊瑚苷抑制H_2O_2诱导PC12细胞凋亡超微结构观察 | 第98-99页 |
| ·桃叶珊瑚苷抑制H_2O_2诱导PC12细胞凋亡细胞周期检测 | 第99-101页 |
| ·桃叶珊瑚苷抑制H_2O_2诱导PC12细胞凋亡乳酸脱氢酶释放率的测定 | 第101-102页 |
| ·桃叶珊瑚苷对Bcl-2家族蛋白表达的影响 | 第102-105页 |
| ·桃叶珊瑚苷对Caspase-3活性的影响 | 第105-106页 |
| ·Western blotting检测PARP蛋白的表达 | 第106-107页 |
| ·讨论 | 第107-110页 |
| ·小结 | 第110页 |
| 参考文献 | 第110-114页 |
| 5 结论与创新点 | 第114-116页 |
| ·结论 | 第114-115页 |
| ·论文创新点 | 第115-116页 |
| 攻读博士学位期间发表学术论文情况 | 第116-117页 |
| 致谢 | 第117-118页 |
