| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 综述 | 第10-26页 |
| 1. 动物卵巢与卵泡介绍 | 第10-17页 |
| ·卵巢的结构 | 第10页 |
| ·卵泡发育 | 第10-13页 |
| ·卵泡的发育与成熟 | 第10-12页 |
| ·排卵过程 | 第12页 |
| ·黄体的形成 | 第12-13页 |
| ·卵泡的闭锁 | 第13页 |
| ·卵泡发育过程中主要的调节因素 | 第13-17页 |
| ·类固醇类激素 | 第13-14页 |
| ·促性腺激素 | 第14页 |
| ·生长因子 | 第14-17页 |
| 2. T GF-β超家族与卵泡发育 | 第17-22页 |
| ·TGF-β超家族介绍 | 第18-20页 |
| ·主要的成员 | 第18页 |
| ·TGF-β信号转导通路 | 第18-20页 |
| ·TGF-β信号通路分子在卵泡发育中的作用 | 第20-22页 |
| ·原始卵泡的发育启动 | 第20-21页 |
| ·初级卵泡到早期有腔卵泡的发育过程 | 第21-22页 |
| ·优势卵泡的选择、排卵及黄体形成 | 第22页 |
| 3. Evi-1 与TGF-β信号通路 | 第22-24页 |
| ·Evi-1 相关知识 | 第22-24页 |
| ·结构 | 第23-24页 |
| ·Evi-1 在组织中的表达 | 第24页 |
| ·Evi-1 与TGF-β信号通路的关系 | 第24页 |
| 4. 本实验开展的意义及研究展望 | 第24-26页 |
| 正文 | 第26-57页 |
| 第一章 KM 小鼠卵巢中Evi-1 蛋白的定位 | 第26-33页 |
| 1. 材料与方法 | 第26-29页 |
| ·小鼠来源及饲养 | 第26页 |
| ·仪器与试剂 | 第26-28页 |
| ·用于冰冻切片载玻片制备 | 第28页 |
| ·小鼠的处理与冰冻切片 | 第28-29页 |
| ·免疫组化 | 第29页 |
| 2. 实验结果 | 第29-31页 |
| 3. 讨论 | 第31-33页 |
| 第二章 小鼠卵泡发育过程中Evi-1 的表达 | 第33-40页 |
| 1. 材料与方法 | 第33-36页 |
| ·小鼠来源及饲养 | 第33页 |
| ·仪器和试剂 | 第33-35页 |
| ·用于冰冻切片载玻片制备 | 第35页 |
| ·小鼠的处理与冰冻切片 | 第35页 |
| ·免疫组化 | 第35-36页 |
| 2. 实验结果 | 第36-38页 |
| 3. 讨论 | 第38-40页 |
| 第三章 激素处理对Evi-1 表达的影响 | 第40-46页 |
| 1. 材料方法 | 第40-43页 |
| ·小鼠来源及饲养 | 第40页 |
| ·试剂及仪器 | 第40-42页 |
| ·用于冰冻切片载玻片制备 | 第42页 |
| ·小鼠处理与冰冻切片 | 第42页 |
| ·免疫组化研究 | 第42-43页 |
| 2. 实验结果 | 第43-45页 |
| 3. 讨论 | 第45-46页 |
| 第四章 Evi-1 mRNA 与排卵相关基因的表达检测 | 第46-51页 |
| 1. 材料与方法 | 第46-49页 |
| ·小鼠来源与饲养 | 第46页 |
| ·仪器及试剂 | 第46-47页 |
| ·小鼠处理 | 第47页 |
| ·小鼠卵巢总RNA 的提取 | 第47-48页 |
| ·Real-time PCR 检测 | 第48-49页 |
| 2. 实验结果 | 第49-50页 |
| 3. 讨论 | 第50-51页 |
| 第五章 Evi-1 在小鼠发情周期中的表达研究 | 第51-57页 |
| 1. 材料方法 | 第51-54页 |
| ·小鼠的来源及饲养 | 第51页 |
| ·仪器及试剂 | 第51-53页 |
| ·载玻片制备 | 第53页 |
| ·小鼠发情周期检测与冰冻切片 | 第53页 |
| ·免疫组化研究 | 第53-54页 |
| 2. 实验结果 | 第54-55页 |
| 3. 讨论 | 第55-57页 |
| 小结 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第67页 |