| 致谢 | 第1-5页 |
| 中文摘要 | 第5页 |
| 英文摘要 | 第5-9页 |
| 引言 | 第9-11页 |
| 1． 文献综述 | 第11-28页 |
| 1．1 诱导抗性的发展历史与研究现状 | 第11-13页 |
| 1．2 化学诱抗剂的诱导抗病作用 | 第13-21页 |
| 1．2．1 无机化合物 | 第13-14页 |
| 1．2．2 天然有机化合物 | 第14-16页 |
| 1．2．3 合成的化合物 | 第16-21页 |
| 1．3 PR蛋白的研究现状 | 第21-28页 |
| 1．3．1 PR蛋白的基本特征 | 第21-22页 |
| 1．3．2 PR的种类、生物学特性 | 第22-24页 |
| 1．3．3 PR蛋白在植物抗病中的作用 | 第24-28页 |
| 2． 材料与方法 | 第28-36页 |
| 2．1 供试材料 | 第28-29页 |
| 2．1．1 供试品种 | 第28页 |
| 2．1．2 辣椒的培育 | 第28-29页 |
| 2．1．3 辣椒细胞悬浮系的建立 | 第29页 |
| 2．1．4 供试菌种孢子悬浮液的制备 | 第29页 |
| 2．2 BABA对辣椒疫霉Phytophthora capsici的活性测定 | 第29-30页 |
| 2．3 BABA诱导辣椒抗病性测定 | 第30-31页 |
| 2．3．1 不同浓度BABA诱导八叶期辣椒抗疫病性测定 | 第30页 |
| 2．3．2 BABA对不同生育期辣椒的诱抗效果测定 | 第30-31页 |
| 2．3．3 BABA诱导辣椒抗疫病性持久期测定 | 第31页 |
| 2．4 诱导处理及特异性蛋白的提取 | 第31-32页 |
| 2．4．1 叶片匀浆中蛋白的提取 | 第31页 |
| 2．4．2 胞间可溶性蛋白的提取 | 第31-32页 |
| 2．4．3 辣椒细胞悬浮系中蛋白的提取 | 第32页 |
| 2．5 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分析 | 第32-33页 |
| 2．5．1 化学试剂 | 第32页 |
| 2．5．2 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第32-33页 |
| 2．5．3 染色 | 第33页 |
| 2．6 辣椒叶片提取液中PR蛋白酶活性测定 | 第33-36页 |
| 2．6．1 酶液的提取 | 第33页 |
| 2．6．2 β-1．3-葡聚糖酶活性测定 | 第33-34页 |
| 2．6．3 几丁质酶活性测定 | 第34-35页 |
| 2．6．4 过氧化物酶活性测定 | 第35-36页 |
| 3． 结果与分析 | 第36-43页 |
| 3．1 BABA对疫酶菌体外生长和培养性状的影响 | 第36页 |
| 3．2 BABA诱导辣椒抗疫病性效果 | 第36-39页 |
| 3．2．1 不同浓度BABA对辣椒的诱抗效果 | 第36-37页 |
| 3．2．2 BABA对不同生育期辣椒的诱抗效果 | 第37-38页 |
| 3．2．3 BABA处理后的抗性持久期 | 第38-39页 |
| 3．3 BABA诱导的特异蛋白电泳结果 | 第39-40页 |
| 3．3．1 叶片匀浆中可溶性蛋白电泳结果 | 第39页 |
| 3．3．2 细胞悬浮系中可溶性蛋白的电泳结果 | 第39页 |
| 3．3．3 细胞间酸溶性蛋白的电泳结果 | 第39-40页 |
| 3．3．4 细胞间碱溶性蛋白的电泳结果 | 第40页 |
| 3．4 BABA诱导后叶片中酶活性分析 | 第40-43页 |
| 4． 小结 | 第43-44页 |
| 5． 讨论 | 第44-48页 |
| 5．1 BABA对辣椒的诱抗效果 | 第44-46页 |
| 5．2 BABA诱导辣椒抗疫病机理 | 第46-48页 |
| 图版说明 | 第48-52页 |
| 图版 1 | 第49-50页 |
| 图版 2 | 第50-51页 |
| 图版 3 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
