| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-13页 |
| 第一章 前言 | 第13-26页 |
| 1 桉树组织培养研究进展 | 第13-15页 |
| ·桉树组织培养的意义 | 第13-14页 |
| ·桉树组织培养研究进展 | 第14-15页 |
| 2 林木抗病基因工程研究进展 | 第15-17页 |
| ·林木基因工程 | 第15-16页 |
| ·林木抗病基因工程研究进展 | 第16-17页 |
| 3 桉树基因工程研究进展 | 第17页 |
| 4 转录因子在植物防卫反应中的作用 | 第17-18页 |
| 5 ERF转录因子研究进展 | 第18-22页 |
| ·ERF转录因子的主要结构特征及分类 | 第18-19页 |
| ·ERF转录因子在植物防卫反应中的作用 | 第19-22页 |
| ·ERF转录因子在植物防卫反应信号传递途径中的作用 | 第19-21页 |
| ·ERF转录因子在提高植物抗病能力中的作用 | 第21-22页 |
| 6 TSRF1转录因子研究进展 | 第22-24页 |
| ·TSRF1转录因子的特性介绍 | 第22-23页 |
| ·TSRF1转录因子的功能介绍 | 第23-24页 |
| 7 本研究的目的意义及主要内容 | 第24-26页 |
| ·尾叶桉U6再生体系的建立 | 第24-25页 |
| ·农杆菌介导桉树转化体系的优化 | 第25-26页 |
| 第二章 尾叶桉的组织培养与快速繁殖 | 第26-50页 |
| 1 材料 | 第26页 |
| 3 实验方法 | 第26-29页 |
| ·主要植物生长调节剂及培养基基本成分的配制 | 第26页 |
| ·主要植物生长调节剂的配制 | 第26页 |
| ·培养基基本成分的配制方法 | 第26页 |
| ·实验材料的获得 | 第26页 |
| ·愈伤组织的诱导 | 第26-28页 |
| ·苗龄 | 第27-28页 |
| ·暗处理时间 | 第28页 |
| ·不同浓度的Vc、Ac(活性炭)及PVP | 第28页 |
| ·不定芽的诱导及分化 | 第28-29页 |
| ·诱导不定芽的产生 | 第28页 |
| ·不定芽的伸长 | 第28-29页 |
| ·诱导丛生芽的增殖 | 第29页 |
| ·不同激素的选择 | 第29页 |
| ·基本培养基 | 第29页 |
| ·再生苗的生根与移栽 | 第29页 |
| ·基本培养基及不同激素组合 | 第29页 |
| ·蔗糖 | 第29页 |
| ·移栽 | 第29页 |
| 4 结果与分析 | 第29-42页 |
| ·不同消毒剂及消毒时间对无菌材料的获得的影响 | 第29-30页 |
| ·愈伤组织的诱导 | 第30-33页 |
| ·苗龄对愈伤组织诱导的影响 | 第31-32页 |
| ·暗处理时间对愈伤组织防褐化的影响 | 第32-33页 |
| ·不同添加剂对愈伤组织抗褐化的影响 | 第33页 |
| ·不定芽的诱导及分化 | 第33-38页 |
| ·诱导不定芽的产生 | 第33-37页 |
| ·不定芽的伸长 | 第37-38页 |
| ·诱导丛生芽的增殖 | 第38-40页 |
| ·不同激素种类及配比对芽增殖的影响 | 第38-39页 |
| ·基本培养基对丛生芽增殖的影响 | 第39-40页 |
| ·再生苗的生根及移栽 | 第40-42页 |
| ·不同浓度的IBA对生根的影响 | 第40-41页 |
| ·不同浓度的NAA与IAA组合对生根的影响 | 第41页 |
| ·蔗糖浓度对生根的影响 | 第41-42页 |
| 5 讨论 | 第42-46页 |
| ·光照对无菌苗继代增殖的影响 | 第42页 |
| ·褐化问题的探讨 | 第42-43页 |
| ·影响褐化的因素 | 第42-43页 |
| ·控制褐化的措施 | 第43页 |
| ·本研究对褐化控制的探讨 | 第43页 |
| ·玻璃化的探讨 | 第43-44页 |
| ·影响玻璃化的因素 | 第44页 |
| ·控制玻璃化的措施 | 第44页 |
| ·本研究对玻璃化控制的探讨 | 第44页 |
| ·关于LC运用的探讨 | 第44-45页 |
| ·多胺对尾叶桉下胚轴不定芽分化与伸长的影响 | 第45-46页 |
| ·生根 | 第46页 |
| ·炼苗 | 第46页 |
| 6 小结 | 第46-47页 |
| 7 附图 | 第47-50页 |
| 第三章 TSRF1基因导入桉树的研究 | 第50-68页 |
| 1 材料 | 第50-51页 |
| ·植物材料 | 第50页 |
| ·菌种与质粒 | 第50页 |
| ·试验用基本培养基 | 第50-51页 |
| ·农杆菌培养基 | 第50页 |
| ·遗传转化基本培养基 | 第50-51页 |
| ·主要试剂及其配制 | 第51页 |
| 2 方法 | 第51-56页 |
| ·尾叶桉抗生素敏感性实验 | 第52页 |
| ·卡那霉素(Kan)抑制桉树下胚轴不定芽分化实验 | 第52页 |
| ·卡那霉素(Kan)抑制桉树生根实验 | 第52页 |
| ·头孢霉素(Cef)耐性实验 | 第52页 |
| ·头孢霉素(Cef)抑制农杆菌实验 | 第52页 |
| ·农杆菌中目的基因的检测 | 第52-53页 |
| ·农杆菌质粒提取 | 第52-53页 |
| ·PCR检测目的基因 | 第53页 |
| ·农杆菌介导的尾叶桉遗传转化体系的建立 | 第53-55页 |
| ·工程菌液的制备 | 第53-54页 |
| ·遗传转化参数的优化 | 第54页 |
| ·转化方法 | 第54-55页 |
| ·转化植株的分子检测 | 第55-56页 |
| ·CTAB法小量提取辣椒基因组总DNA | 第55-56页 |
| ·PCR检测目的基因 | 第56页 |
| 3 实验结果 | 第56-62页 |
| ·尾叶桉抗生素敏感性实验 | 第56-58页 |
| ·卡那霉素选择压的确定 | 第56-57页 |
| ·头孢霉素对桉树下胚轴不定芽诱导的影响 | 第57-58页 |
| ·头孢霉素对农杆菌的抑制作用 | 第58页 |
| ·PCR检测质粒中的目的基因 | 第58-62页 |
| ·预培养时间对转化的影响 | 第59页 |
| ·农杆菌菌液浓度对转化的影响 | 第59-60页 |
| ·侵染时间对转化的影响 | 第60-61页 |
| ·共培养时间对转化的影响 | 第61页 |
| ·农杆菌介导尾叶桉遗传转化体系的建立 | 第61页 |
| ·转基因植株的PCR检测 | 第61-62页 |
| 4 讨论 | 第62-68页 |
| ·影响桉树转化的因素 | 第62-64页 |
| ·影响桉树抗生素敏感性试验的因素 | 第64页 |
| ·预培养时间对转化的影响 | 第64-65页 |
| ·侵染时间对转化的影响 | 第65页 |
| ·共培养时间对转化的影响 | 第65页 |
| ·延迟筛选对转化的影响 | 第65-66页 |
| ·关于检测方法的比较 | 第66页 |
| ·关于假转化体和基因沉默 | 第66-68页 |
| 本研究的主要创新点及下一步工作设想 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-78页 |
| 缩略表 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 作者简介 | 第80页 |