中文摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-12页 |
第一章 绪论 | 第12-33页 |
1 多肽、蛋白药物的多糖类缓释载体 | 第12-15页 |
2 海藻多糖----琼脂糖的开发与应用 | 第15-21页 |
·开发海洋生物材料的意义 | 第15页 |
·琼脂糖 | 第15-16页 |
·琼脂糖的制备与鉴定 | 第16-17页 |
·琼脂糖在生物医药中的应用 | 第17-20页 |
·琼脂糖的改性 | 第20-21页 |
3 透明质酸 | 第21-30页 |
·透明质酸的来源和分布 | 第21-22页 |
·HA的化学结构与理化性质 | 第22页 |
·HA的生理作用与应用 | 第22-28页 |
·HA的生理作用 | 第22页 |
·细胞生物学效应 | 第22-24页 |
·HA在皮肤伤口愈合中的作用 | 第24页 |
·HA在组织工程中的应用 | 第24-26页 |
·HA作为药物载体 | 第26-28页 |
·HA的制备 | 第28-29页 |
·组织提取法 | 第28页 |
·发酵法 | 第28页 |
·人工合成法 | 第28-29页 |
·HA的改性 | 第29-30页 |
4 本课题的设计路线 | 第30-33页 |
·研究背景及意义 | 第30-31页 |
·实验方案及技术路线 | 第31-33页 |
第二章 琼脂糖接枝透明质酸共聚物的制备与表征 | 第33-51页 |
前言 | 第33-34页 |
1 实验部分 | 第34-38页 |
·仪器与材料 | 第34-35页 |
·仪器 | 第34页 |
·材料 | 第34-35页 |
·方法 | 第35-38页 |
·Ag-g-HA的制备 | 第35-36页 |
·Ag-g-HA的结构表征 | 第36页 |
·Ag-g-HA的生物学评价 | 第36-38页 |
·溶血试验 | 第36-37页 |
·急性全身毒性试验 | 第37页 |
·热原试验 | 第37页 |
·体内降解实验 | 第37-38页 |
2 结果与讨论 | 第38-50页 |
·琼脂糖的降解 | 第38-39页 |
·琼脂糖的活化 | 第39-40页 |
·琼脂糖接枝透明质酸 | 第40-42页 |
·Zeta电位 | 第42-43页 |
·溶血试验 | 第43-44页 |
·急性全身毒性试验 | 第44页 |
·热原试验 | 第44页 |
·体内降解实验 | 第44-50页 |
·大体观察 | 第44-46页 |
·材料降解定量分析 | 第46-50页 |
3 结论 | 第50-51页 |
第三章 Ag-g-HA复合胰岛素及其生物学评价 | 第51-69页 |
第一节 Ag-g-HA/胰岛素的制备及释药行为 | 第51-60页 |
前言 | 第51页 |
1 实验部分 | 第51-53页 |
·仪器与材料 | 第51-52页 |
·仪器 | 第51-52页 |
·材料 | 第52页 |
·Ag-g-HA复合胰岛素(Ag-g-HA/INS)的制备 | 第52-53页 |
·Ag-g-HA/INS复合物的结构与性能 | 第53页 |
2 结果与讨论 | 第53-59页 |
·Ag-g-HA包复胰岛素 | 第53-55页 |
·包复率与载药量 | 第55-56页 |
·体外释放实验 | 第56-58页 |
·释药模型的拟合 | 第58-59页 |
3 结论 | 第59-60页 |
第二节 Ag-g-HA/胰岛素的特异吸收特性评价 | 第60-69页 |
前言 | 第60页 |
1 实验部分 | 第60-65页 |
·仪器与材料 | 第60-63页 |
·材料 | 第61页 |
·仪器 | 第61-62页 |
·主要试剂配置方法 | 第62-63页 |
·方法 | 第63-65页 |
·Caco-2单层细胞培养 | 第63页 |
·Caco-2细胞模型的评价指标 | 第63-64页 |
·HPLC分析 | 第64页 |
·转运实验 | 第64-65页 |
2 结果 | 第65-67页 |
·显微镜观察 | 第65页 |
·碱性磷酸酶活性 | 第65-66页 |
·细胞形成的单层膜紧密性 | 第66-67页 |
·细胞模型的通透性 | 第67页 |
·转动实验结果 | 第67页 |
3 讨论 | 第67-68页 |
4 结论 | 第68-69页 |
第四章 Ag-g-HA复合bFGF海绵作为皮肤敷料的研究 | 第69-98页 |
第一节 Ag-g-HA复合bFGF海绵的制备及表征 | 第69-76页 |
前言 | 第69-70页 |
1 实验部分 | 第70-72页 |
·仪器与材料 | 第70-71页 |
·仪器 | 第70页 |
·材料 | 第70-71页 |
·Ag-g-HA复合bFGF海绵的制备 | 第71页 |
·配制Ag-g-HA溶液 | 第71页 |
·混合 | 第71页 |
·真空冷冻干燥 | 第71页 |
·Ag-g-HA复合bFGF海绵的表征 | 第71-72页 |
·扫描电镜观察 | 第71页 |
·复合海绵吸水率测定 | 第71-72页 |
2 结果与讨论 | 第72-75页 |
·Ag-g-HA复合bFGF海绵的物理结构 | 第72-73页 |
·Ag-g-HA复合bFGF海绵的吸水性能 | 第73-75页 |
3 结论 | 第75-76页 |
第二节 Ag-g-HA复合bFGF海绵释药行为及生物活性评价 | 第76-85页 |
前言 | 第76页 |
1 实验部分 | 第76-80页 |
·仪器与材料 | 第76-78页 |
·材料 | 第76-77页 |
·仪器 | 第77-78页 |
·1640完全培养基配制 | 第78页 |
·方法 | 第78-80页 |
·bFGF在Ag-g-HA海绵的体外释放 | 第78-80页 |
·Ag-g-HA复合bFGF海绵对成纤维细胞的作用 | 第80页 |
·统计分析 | 第80页 |
2 结果与讨论 | 第80-84页 |
·Ag-g-HA复合bFGF海绵的释药行为 | 第80-82页 |
·Ag-g-HA复合bFGF海绵对成纤维细胞的作用 | 第82-84页 |
3 结论 | 第84-85页 |
第三节 Ag-g-HA复合bFGF海绵对小鼠创面愈合的影响 | 第85-98页 |
前言 | 第85-86页 |
1 实验部分 | 第86-90页 |
·仪器与材料 | 第86-88页 |
·仪器 | 第86-87页 |
·材料 | 第87页 |
·主要试剂配置方法 | 第87-88页 |
·方法 | 第88-90页 |
·实验分组及移植过程 | 第88页 |
·创面愈合情况大体观察 | 第88-89页 |
·组织学观察 | 第89-90页 |
·小鼠血浆bFGF浓度变化 | 第90页 |
·统计学处理 | 第90页 |
2 结果与讨论 | 第90-97页 |
·创面愈合大体观察 | 第90-93页 |
·组织学分析 | 第93-95页 |
·术后血浆bFGF浓度变化 | 第95-97页 |
3 结论 | 第97-98页 |
全文结论 | 第98-100页 |
参考文献 | 第100-116页 |
博士期间发表的论文 | 第116-117页 |
致谢 | 第117页 |