| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-13页 |
| 第1章 甲基莲心碱对高糖致血管内皮细胞损伤的保护作用及作用机理研究 | 第13-40页 |
| 引言 | 第13-15页 |
| 材料与方法 | 第15-27页 |
| 1. 材料 | 第15-20页 |
| ·细胞 | 第15页 |
| ·主要试剂 | 第15-16页 |
| ·主要仪器 | 第16-17页 |
| ·溶液配制 | 第17-20页 |
| 2. 方法 | 第20-27页 |
| ·HUVEC的原代分离培养和分组 | 第20页 |
| ·HUVEC的鉴定 | 第20页 |
| ·细胞计数和MTS法确定甲基莲心碱浓度 | 第20-21页 |
| ·细胞培养上清液NO含量测定 | 第21-22页 |
| ·细胞内ROS的测定 | 第22页 |
| ·RT2 Profiler~(TM) PCR Array:人内皮细胞功能相关基因表达 | 第22-24页 |
| ·甲基莲心碱对HUVEC CCL5和CCR5表达的影响 | 第24-27页 |
| ·统计方法 | 第27页 |
| 结果 | 第27-35页 |
| ·原代培养的HUVEC鉴定 | 第27页 |
| ·甲基莲心碱浓度的确定 | 第27-28页 |
| ·细胞培养上清液中NO的含量 | 第28-29页 |
| ·细胞内ROS水平 | 第29-30页 |
| ·PCR芯片检测人内皮细胞功能相关基因表达 | 第30-32页 |
| ·甲基莲心碱对HUVEC CCL5和CCR5 mRNA表达的影响 | 第32-34页 |
| ·甲基莲心碱对HUVEC CCL5和CCR5蛋白表达的影响 | 第34-35页 |
| 讨论 | 第35-40页 |
| 第2章 甲基莲心碱对糖尿病大鼠外周神经节的作用及其机制研究 | 第40-62页 |
| 引言 | 第40-41页 |
| 材料与方法 | 第41-49页 |
| 1. 材料 | 第41-44页 |
| ·实验动物 | 第41-42页 |
| ·主要试剂 | 第42页 |
| ·主要仪器 | 第42页 |
| ·溶液配制 | 第42-44页 |
| 2. 方法 | 第44-49页 |
| ·实验动物模型的制备和分组 | 第44页 |
| ·空腹血糖、血胰岛素、血脂的测定 | 第44-45页 |
| ·血压测定 | 第45页 |
| ·糖尿病大鼠颈上神经节实验 | 第45-49页 |
| ·糖尿病大鼠心肌实验 | 第49页 |
| ·统计方法 | 第49页 |
| 结果 | 第49-60页 |
| ·实验动物特征和体重变化 | 第49-50页 |
| ·空腹血糖、血胰岛素和血脂变化 | 第50-51页 |
| ·血压变化 | 第51-52页 |
| ·颈上神经节趋化因子5及其受体CCR5表达的变化 | 第52-57页 |
| ·心肌组织趋化因子5及其受体CCR5表达的变化 | 第57-60页 |
| 讨论 | 第60-62页 |
| 第3章 甲基莲心碱对糖尿病大鼠颈上神经节蛋白质组学影响的研究 | 第62-82页 |
| 引言 | 第62-63页 |
| 材料与方法 | 第63-70页 |
| 1. 村料 | 第63-67页 |
| ·实验动物 | 第63页 |
| ·主要试剂 | 第63-64页 |
| ·主要仪器 | 第64页 |
| ·溶液配制 | 第64-67页 |
| 2 方法 | 第67-70页 |
| ·实验动物模型的制备和分组 | 第67页 |
| ·蛋白质提取和定量 | 第67-68页 |
| ·双向电泳 | 第68-70页 |
| ·统计方法 | 第70页 |
| 结果 | 第70-78页 |
| ·双向电泳差异蛋白点的发现 | 第70-75页 |
| ·蛋白印迹对双向电泳结果的验证 | 第75-78页 |
| 讨论 | 第78-82页 |
| 第4章 结论 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-91页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第91-93页 |
| 综述一 | 第93-102页 |
| 参考文献 | 第99-102页 |
| 综述二 | 第102-107页 |
| 参考文献 | 第106-107页 |
