| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第11-21页 |
| ·课题的提出 | 第11-12页 |
| ·国内外前人研究进展 | 第12-20页 |
| ·病程相关蛋白研究进展 | 第12-14页 |
| ·病程相关蛋白的分类和生物学特征 | 第12-13页 |
| ·病程相关蛋白的功能 | 第13-14页 |
| ·魔芋软腐病研究进展 | 第14-16页 |
| ·魔芋组织培养研究进展 | 第16-18页 |
| ·魔芋组织培养形态建成途径 | 第16-17页 |
| ·体细胞无性系变异与突变体诱导 | 第17-18页 |
| ·根癌农杆菌介导的植物遗传转化机理 | 第18-19页 |
| ·魔芋转基因研究进展 | 第19-20页 |
| ·本课题研究的目的和内容 | 第20-21页 |
| ·研究目的 | 第20页 |
| ·研究内容 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-30页 |
| ·实验材料 | 第21-22页 |
| ·植物材料 | 第21页 |
| ·菌种和质粒 | 第21页 |
| ·工具酶和试剂 | 第21页 |
| ·实验中所用培养基配方 | 第21-22页 |
| ·细菌用培养基 | 第21页 |
| ·植物培养基 | 第21-22页 |
| ·实验方法 | 第22-30页 |
| ·植物材料的处理 | 第22页 |
| ·愈伤组织诱导和植株再生 | 第22页 |
| ·花魔芋试管苗不同形态学部位叶柄切段诱导愈伤组织形成 | 第22-23页 |
| ·花魔芋试管苗叶柄切段的接种 | 第22-23页 |
| ·实验结果统计方法 | 第23页 |
| ·以花魔芋试管苗叶柄切段为外植体的遗传转化 | 第23-24页 |
| ·花魔芋试管苗叶柄切段的预培养 | 第23页 |
| ·农杆菌菌液的准备 | 第23页 |
| ·农杆菌的侵染和共培养 | 第23页 |
| ·抗性愈伤组织诱导和分化 | 第23-24页 |
| ·抗性芽的PCR检测和扩繁 | 第24-25页 |
| ·抗性芽叶片总 DNA的小量提取 | 第24页 |
| ·抗性芽的PCR检测 | 第24-25页 |
| ·抗性芽的扩繁 | 第25页 |
| ·StPRp27蛋白信息分析 | 第25页 |
| ·StPRp27基因原核表达载体的构建 | 第25-28页 |
| ·原核表达载体的构建 | 第25-27页 |
| ·质粒的小量提取 | 第27页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备及转化 | 第27-28页 |
| ·GST-StPRp27融合蛋白的纯化及抑菌功能研究 | 第28-30页 |
| ·GST-StPRp27融合蛋白的诱导表达 | 第28页 |
| ·可溶性 GST-StPRp27融合蛋白和 GST蛋白的纯化 | 第28-29页 |
| ·纯化的GST融合蛋白对魔芋软腐病菌的抑制实验 | 第29-30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-42页 |
| ·StPRp27蛋白信息分析 | 第30-31页 |
| ·StPRp27对魔芋软腐病菌生长抑制研究 | 第31-34页 |
| ·StPRp27基因原核表达载体的构建 | 第31页 |
| ·GST融合蛋白的表达和回收 | 第31-34页 |
| ·花魔芋叶柄高效培养再生体系的建立 | 第34-36页 |
| ·花魔芋转化体系建立及StPRp27基因的转化 | 第36-40页 |
| ·试管苗叶柄切段预培养对转化效果的影响 | 第36-39页 |
| ·转化后愈伤组织的分化与转化植株再生 | 第39-40页 |
| ·转化植株的PCR检测与转基因株系扩繁 | 第40-42页 |
| 4 讨论 | 第42-45页 |
| ·魔芋遗传转化体系受体材料的选择 | 第42页 |
| ·以叶柄切段为外植体的魔芋遗传转化体系的优化 | 第42-44页 |
| ·病程相关蛋白PR-17家族可能具有的功能分析 | 第44页 |
| ·不足与展望 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
