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井冈霉素和盐霉素的高产机理与改造

摘要第5-8页
ABSTRACT第8-11页
第一篇 “弱化初级代谢提高抗生素产量”的改造策略第16-94页
    第一章 文献综述第16-34页
        1.1 井冈霉素的研究现状第16-25页
            1.1.1 井冈霉素的生物合成研究进展第17-21页
            1.1.2 井冈霉素的发酵工程研究进展第21-23页
            1.1.3 井冈霉素产生菌组学研究进展第23-25页
        1.2 放线菌高产菌株代谢工程改造概述第25-32页
            1.2.1 阿维菌素高产菌株代谢工程改造第25-27页
            1.2.2 红霉素高产菌株代谢工程改造第27-28页
            1.2.3 匹马霉素高产菌株代谢工程改造第28-30页
            1.2.4 克拉维酸高产菌株代谢工程改造第30-31页
            1.2.5 林可霉素高产菌株代谢工程改造第31-32页
        1.3 研究的内容和目的第32-34页
            1.3.1 研究内容第32-33页
            1.3.2 研究目的第33-34页
    第二章 实验材料与方法第34-55页
        2.1 研究中所用菌株第34-36页
        2.2 研究中所用质粒第36-38页
        2.3 研究中所用引物第38-46页
        2.4 研究中所用培养基第46-47页
        2.5 研究中所用试剂和缓冲液第47-48页
        2.6 实验方法第48-55页
    第三章 “弱化初级代谢提高抗生素产量”假说的提出和验证第55-66页
        3.1 前言第55页
        3.2 结果与讨论第55-65页
            3.2.1 三个大片段缺失起关键贡献第55-57页
            3.2.2 大片段缺失突变株产量和生物量变化呈负相关第57-58页
            3.2.3 Det-Ⅰ 和 Det-Ⅲ 区域关键基因的鉴定第58-60页
            3.2.4 大片段缺失突变株代谢物组分析第60-62页
            3.2.55008 及TL01 的定向高产改造第62-65页
        3.3 小结第65-66页
    第四章 多种抗生素产生菌株初级代谢的弱化改造第66-83页
        4.1 前言第66页
        4.2 结果与讨论第66-81页
            4.2.1 红霉素产生菌Saccharopolyspora erythraea NRRL2338 改造第66-70页
            4.2.2 林可霉素产生菌Streptomyces lincolnensis LC-G改造第70-72页
            4.2.3 庆大霉素产生菌Micromonospora echinospora ATCC15838 改造第72-75页
            4.2.4 阿维菌素产生菌Streptomyces avermitilis76-5 改造第75-81页
        4.3 小结第81-83页
    第五章 链霉菌线型质粒pSHJG1 的功能研究第83-94页
        5.1 前言第83页
        5.2 结果与讨论第83-92页
            5.2.1 TL01 中线型质粒pSHJG1 整体呈现低表达第83-84页
            5.2.2 线型质粒消除策略的建立和完善第84-87页
            5.2.3 线型质粒消除提高井冈霉素产量第87-90页
            5.2.4 线型质粒pSHJG1 中关键基因的确认第90-91页
            5.2.5 线型质粒 p HZ228 消除提高抗生素 FR008/杀念菌素产量第91-92页
        5.3 小结第92-94页
第二篇 盐霉素产生菌基因组解析及定向高产改造第94-148页
    第六章 文献综述第94-114页
        6.1 盐霉素的研究现状第94-103页
            6.1.1 盐霉素的生物合成研究进展第95-102页
            6.1.2 盐霉素的发酵工程研究进展第102-103页
        6.2 PKS常用辅酶A类前体研究现状第103-113页
            6.2.1 丙二酰辅酶A(malonyl-CoA)第104-105页
            6.2.2 甲基丙二酰辅酶A((2S)-methylmalonyl-CoA)第105-108页
            6.2.3 乙基丙二酰辅酶A((2S)-ethylmalonyl-CoA)第108-110页
            6.2.4 氯代乙基丙二酰辅酶A(chloroethylmalonyl-CoA)第110-111页
            6.2.5 其他辅酶A类前体第111-113页
        6.3 研究内容第113-114页
            6.3.1 研究内容第113-114页
    第七章 实验材料与方法第114-122页
        7.1 研究中所用菌株第114-115页
        7.2 研究中所用质粒第115-116页
        7.3 研究中所用引物第116-119页
        7.4 研究中所用培养基第119页
        7.5 实验方法第119-122页
    第八章 白色链霉菌DSM41398 基因组完整图谱构建和解析第122-138页
        8.1 前言第122-123页
        8.2 结果与讨论第123-137页
            8.2.1 S.albus DSM41398 全基因组完整图谱的构建第123-125页
            8.2.2 S.albus DSM41398 全基因组的基本特征第125-128页
            8.2.3 S.albus DSM41398 中次级代谢生物合成基因簇的功能预测第128-130页
            8.2.4 参与盐霉素合成的前体代谢网络重构第130-132页
            8.2.5 S.albus DSM41398 豆油利用偏好性研究第132-137页
        8.3 小结第137-138页
    第九章 前体浓度微调整促进盐霉素产量提高第138-148页
        9.1 前言第138页
        9.2 结果与讨论第138-147页
            9.2.1 PKS生物合成基因簇的生物信息学分析第138-139页
            9.2.2 PKS生物合成基因簇的转录量分析第139-140页
            9.2.3 竞争基因簇中断促进产量提高第140-141页
            9.2.4 组合缺失突变株产量没有进一步的提高第141-142页
            9.2.5 乙基丙二酰辅酶A的供应是新的限速步骤第142-143页
            9.2.6 编码巴豆酰辅酶A还原酶基因的鉴定第143-145页
            9.2.7 超量表达ccr基因促进组合缺失突变株产量进一步提高第145-146页
            9.2.8 超量表达ccr基因促进高产菌株产量进一步提高第146-147页
        9.3 小结第147-148页
第十章 总结与展望第148-150页
    10.1 总结第148页
    10.2 本研究的创新点第148-149页
    10.3 工作展望第149-150页
参考文献第150-162页
致谢第162-164页
攻读博士期间的研究成果第164页

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