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嗜热木聚糖酶基因Umxyn10A在大肠杆菌中的重组表达及其热稳定性的改造

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-8页
第一章 前言第14-26页
    1.1 木聚糖第14-15页
    1.2 低聚木糖第15-16页
    1.3 木聚糖酶第16-21页
        1.3.1 木聚糖酶的定义第16页
        1.3.2 木聚糖酶的类别第16-17页
        1.3.3 木聚糖酶的催化机制第17-18页
        1.3.4 木聚糖酶的空间结构第18-19页
            1.3.4.1 GH 10家族木聚糖酶三维结构第18-19页
            1.3.4.2 GH 11家族木聚糖酶三维结构第19页
        1.3.5 木聚糖酶的应用第19-21页
            1.3.5.1 造纸工业第19-20页
            1.3.5.2 生物燃料工业第20页
            1.3.5.3 食品和饲料行业第20页
            1.3.5.4 木聚糖酶工业应用的限制第20-21页
    1.4 木聚糖酶热稳定性的研究第21-23页
        1.4.1 盐桥第21页
        1.4.2 二硫键第21-22页
        1.4.3 疏水作用第22页
        1.4.4 氢键第22-23页
        1.4.5 某些特殊氨基酸第23页
    1.5 木聚糖酶热稳定性的分子改造第23-25页
        1.5.1 定向进化第24页
        1.5.2 理性设计第24-25页
    1.6 课题研究的意义及目标第25-26页
第二章 材料与方法第26-43页
    2.1 材料第26-29页
        2.1.1 质粒与菌株第26-27页
        2.1.2 常用培养基与试剂的配制第27-29页
        2.1.4 主要网站和软件第29页
    2.2 实验方法第29-43页
        2.2.1 木聚糖酶Umxyn1OA的密码子优化第29-30页
        2.2.2 突变位点的选择第30-31页
        2.2.3 Umxyn1OA基因和突变酶基因的扩增第31-33页
            2.2.3.1 Umxyn1OA基因的扩增第31页
            2.2.3.2 突变酶基因的扩增第31-33页
        2.2.4 重组质粒的构建第33-36页
            2.2.4.1 双酶切目的基因和质粒pET30a第33-34页
            2.2.4.2 目的基因与载体pET30a连接第34-35页
            2.2.4.3 重组质粒的Trans-T1转化第35页
            2.2.4.4 重组子的鉴定及筛选第35-36页
            2.2.4.5 重组质粒的提取及测序第36页
        2.2.5 重组木聚糖酶基因的诱导表达第36-37页
            2.2.5.1 大肠杆菌Transetta(DE3)化学转化第36-37页
            2.2.5.2 重组大肠杆菌的诱导表达第37页
        2.2.6 重组表达产物的鉴定和分析第37-41页
            2.2.6.1 SDS-PAGE蛋白电泳第37-38页
            2.2.6.2 重组蛋白的镍柱纯化第38页
            2.2.6.3 木聚糖酶酶活的测定第38-39页
            2.2.6.4 蛋白浓度标准曲线的制备第39-41页
        2.2.7 重组蛋白酶学性质的测定第41-43页
            2.2.7.1 最适反应pH的测定第41页
            2.2.7.2 最适反应温度的测定第41页
            2.2.7.3 pH耐受性第41页
            2.2.7.4 热稳定性第41页
            2.2.7.5 金属离子、表面活性剂、螯合剂对酶活力的影响第41-42页
            2.2.7.6 底物特异性的测定第42页
            2.2.7.7 动力学参数测定第42页
            2.2.7.8 木聚糖酶对低聚木糖的水解第42-43页
第三章 结果与讨论第43-76页
    3.1 野生型基因Umxyn10A在大肠杆菌中的重组表达及其酶学性质的研究第43-51页
        3.1.1 生物信息学分析第43页
        3.1.2 重组质粒的构建第43-44页
        3.1.3 Umxyn10A在大肠杆菌中的表达与纯化第44-45页
        3.1.4 重组木聚糖酶Umxyn10A的酶学性质第45-51页
            3.1.4.1 最适pH和最适温度第45-46页
            3.1.4.2 pH耐受性和热稳定性第46-48页
            3.1.4.3 金属离子、表面活性剂、螫合剂对木聚糖酶Umxyn10A酶活力的影响第48页
            3.1.4.4 底物特异性第48-49页
            3.1.4.5 木聚糖酶Umxyn10A的动力学参数第49-50页
            3.1.4.6 重组酶Umxyn10A对低聚木糖的水解第50-51页
        3.1.5 小结与讨论第51页
    3.2 木聚糖酶Umxyn10A的定点突变第51-71页
        3.2.1 突变位点的选择第52-54页
        3.2.2 突变酶基因的扩增第54页
        3.2.3 突变酶基因重组质粒的构建第54-55页
        3.2.4 突变酶基因在大肠杆菌中的诱导表达第55-56页
        3.2.5 突变酶重组蛋白的纯化第56-57页
        3.2.6 突变酶的酶学性质第57-69页
            3.2.6.1 突变酶的最适pH第57-58页
            3.2.6.2 突变酶的最适温度第58-60页
            3.2.6.3 突变酶在不同温度下的热稳定性第60-63页
            3.2.6.4 突变酶Umxyn10A~(A31F)和Umxyn10A~(L307V)的热稳定性第63-64页
            3.2.6.5 突变酶Umxyn10A~(A31F)和Umxyn10A~(L307V)的pH耐受性第64-65页
            3.2.6.6 金属离子、表面活性剂和螯合剂对突变酶酶活力的影响第65-66页
            3.2.6.7 突变酶Umxyn10A~(A31F)和Umxyn10A~(L307V)动力学常数第66-67页
            3.2.6.8 突变酶Umxyn10A~(A31F)和Umxyn10A~(L307V)对低聚木糖的水解第67-69页
        3.2.7 小结与讨论第69-71页
            3.2.7.1 增加盐桥数目对木聚糖酶热稳定性的影响第69页
            3.2.7.2 二硫键对木聚糖酶热稳定性的影响第69页
            3.2.7.3 疏水相互作用对木聚糖酶热稳定性的影响第69-70页
            3.2.7.4 引入脯氨酸对木聚糖酶热稳定性的影响第70-71页
    3.3 耐热突变体的组合第71-76页
        3.3.1 突变酶Umxyn10A~(A31F/L307V)重组表达质粒的构建第71-72页
        3.3.3 突变酶Umxyn10A~(A31F/L307V)的表达与纯化第72-73页
        3.3.4 突变酶Umxyn10A~(A31F/L307V)的酶学特性第73-75页
            3.3.4.1 突变酶Umxyn10A~(A31F/L307V)的最适pH和最适温度第73-74页
            3.3.4.2 突变酶Umxyn10A~(A31F/L307V)的热稳定性第74-75页
        3.3.5 小结与讨论第75-76页
第四章 总结与展望第76-77页
参考文献第77-86页
致谢第86-87页
攻读硕士学位期间发表论文和发明专利情况第87页

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