| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第11-21页 |
| 1.1 人参皂苷的分类和结构 | 第11-13页 |
| 1.2 人参皂苷的理化性质和药理活性 | 第13-15页 |
| 1.2.1 人参皂苷的理化性质 | 第13-14页 |
| 1.2.2 人参主皂苷的药理活性 | 第14页 |
| 1.2.3 稀有人参皂苷C-K、F2和Rh1的药理活性 | 第14-15页 |
| 1.3 稀有人参皂苷的制备方法 | 第15-18页 |
| 1.3.1 物理方法 | 第15-16页 |
| 1.3.2 化学方法 | 第16-17页 |
| 1.3.3 生物方法 | 第17-18页 |
| 1.4 内生菌 | 第18-20页 |
| 1.4.1 内生菌的概念 | 第18页 |
| 1.4.2 内生菌的分离和鉴定 | 第18-19页 |
| 1.4.3 内生菌的研究现状 | 第19-20页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第20-21页 |
| 第二章 内生菌的分离、纯化及高活性内生菌的鉴定 | 第21-33页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第21-22页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第21页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第21页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第21-22页 |
| 2.1.4 培养基 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-26页 |
| 2.2.1 内生菌的分离纯化 | 第22页 |
| 2.2.2 产β-葡萄糖苷酶内生菌的筛选 | 第22-23页 |
| 2.2.3 高活性内生菌的筛选 | 第23页 |
| 2.2.4 高活性内生菌的形态学观察 | 第23-24页 |
| 2.2.5 高活性内生菌的DNA提取及鉴定 | 第24-26页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第26-31页 |
| 2.3.1 内生菌的分离及筛选 | 第26页 |
| 2.3.2 高活性内生菌的形态学观察 | 第26-27页 |
| 2.3.3 高活性内生菌的鉴定 | 第27-31页 |
| 2.4 本章小结 | 第31-33页 |
| 第三章 内生菌对人参根总皂苷的生物转化 | 第33-40页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第33页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第33页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第33页 |
| 3.2 实验方法 | 第33-34页 |
| 3.2.1 内生菌对人参根总皂苷的生物转化 | 第33页 |
| 3.2.2 优化人参根总皂苷的发酵条件 | 第33-34页 |
| 3.2.3 表征方法 | 第34页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第34-39页 |
| 3.3.1 内生菌JG09发酵条件的优化 | 第34-35页 |
| 3.3.2 内生菌JG10发酵条件的优化 | 第35-37页 |
| 3.3.3 内生菌D19发酵条件的优化 | 第37-38页 |
| 3.3.4 高效液相色谱法分析人参根总皂苷含量变化 | 第38-39页 |
| 3.4 本章小结 | 第39-40页 |
| 第四章 内生菌对人参主皂苷的生物转化 | 第40-55页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第40页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第40页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第40页 |
| 4.2 实验方法 | 第40-41页 |
| 4.2.1 标准曲线的绘制 | 第40页 |
| 4.2.2 内生菌JG09、JG10和D19对人参主皂苷的生物转化 | 第40-41页 |
| 4.2.3 内生菌JG09对人参皂苷转化路径的探讨 | 第41页 |
| 4.2.4 表征方法 | 第41页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第41-53页 |
| 4.3.1 内生菌JG09、JG10、D19对单体皂苷的转化 | 第41-44页 |
| 4.3.2 人参皂苷转化过程中代谢产物的含量变化 | 第44-46页 |
| 4.3.3 内生菌JG09对人参主皂苷转化路径的探讨 | 第46-53页 |
| 4.4 本章小结 | 第53-55页 |
| 第五章 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
