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黍子过氧化物酶诱导结直肠癌细胞Necroptosis的机制

中文摘要第10-12页
ABSTRACT第12-14页
第一章 文献综述第15-23页
    1.1 Necroptosis第15-20页
        1.1.1 Necroptosis的机制第15-16页
        1.1.2 Necroptosis关键分子第16-18页
        1.1.3 RIPK3的甲基化现象第18-19页
        1.1.4 Necroptosis与ROS第19-20页
    1.2 结直肠癌发病率与谷物消费量第20-21页
    1.3 过氧化物酶第21页
    1.4 研究的目的与意义第21-23页
第二章 PmPOD的提取纯化及性能鉴定第23-31页
    2.1 引言第23页
    2.2 试剂及仪器第23页
    2.3 方法第23-25页
        2.3.1 PmPOD的提取与纯化第23-24页
        2.3.2 SDS-PAGE分析第24页
        2.3.3 质谱鉴定第24页
        2.3.4 紫外扫描及热稳定性检测第24-25页
        2.3.5 蛋白浓度测定第25页
    2.4 结果第25-29页
        2.4.1 PmPOD分离纯化及分子量鉴定第25-27页
        2.4.2 PmPOD热稳定性第27-28页
        2.4.3 PmPOD性质鉴定第28页
        2.4.4 PmPOD质谱鉴定第28-29页
    2.5 讨论第29-31页
第三章 PmPOD诱导细胞死亡方式及关键分子检测第31-49页
    3.1 引言第31页
    3.2 试剂及仪器第31-32页
    3.3 方法第32-37页
        3.3.1 细胞活力检测第32-33页
        3.3.2 Hoechst33342和PI染色第33页
        3.3.3 pCMV-RIPK3-GFP和pCMV-MLKL-DsRed2质粒转染第33-34页
        3.3.4 WesternBlot检测第34-35页
        3.3.5 qRT-PCR检测第35-36页
        3.3.6 TNF-α的含量测定第36页
        3.3.7 甲基化特异性的PCR检测第36页
        3.3.8 siRIPK1和siRIPK3干扰第36-37页
    3.4 结果第37-46页
        3.4.1 PmPOD敏感株的筛选第37-38页
        3.4.2 PmPOD诱导结直肠癌细胞死亡方式的确定第38-39页
        3.4.3 Hoechst33342和PI双染验证第39-40页
        3.4.4 PmPOD对RIPK3和MLKL的影响第40-41页
        3.4.5 siRIPK1和siRIPK3对细胞活力的影响第41-42页
        3.4.6 Necroptosis发生时标志蛋白的变化第42-43页
        3.4.7 PmPOD诱导TNF-α的自分泌第43-44页
        3.4.8 RIPK3在HCT116细胞中表达第44-45页
        3.4.9 去甲基化试剂5-AD对RIPK3表达的影响第45-46页
        3.4.10 过表达的RIPK3对细胞死亡的影响第46页
    3.5 讨论第46-49页
第四章 PmPOD诱导细胞ROS升高第49-61页
    4.1 引言第49页
    4.2 试剂及仪器第49页
    4.3 方法第49-51页
        4.3.1 活性氧检测第49-50页
        4.3.2 丙二醛含量的检测第50页
        4.3.3 超氧化物歧化酶的检测第50-51页
        4.3.4 GSH和GSSG的检测第51页
    4.4 结果第51-58页
        4.4.1 PmPOD诱导HCT116和HT29活性氧升高第51-52页
        4.4.2 抗氧化剂对PmPOD诱导细胞死亡的影响第52-53页
        4.4.3 PmPOD诱导HCT116与HT29细胞氧化损伤第53-55页
        4.4.4 RIPK1和RIPK3调控PmPOD诱导的氧化水平第55-57页
        4.4.5 siRIPK1和siRIPK3对ROS的影响第57-58页
    4.5 讨论第58-61页
小结与展望第61-63页
参考文献第63-69页
攻读学位期间取得的研究成果第69-70页
致谢第70-71页
个人简况及联系方式第71-74页

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