摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
缩略语 | 第9-14页 |
第一章 引言 | 第14-24页 |
1.1 铝毒害对植物的影响 | 第14页 |
1.2 植物抵抗铝毒害机制 | 第14-15页 |
1.3 铝胁迫下植物根系有机酸分泌的途径及其作用 | 第15-17页 |
1.3.1 铝胁迫下有机酸分泌的种类及其特点 | 第15-16页 |
1.3.2 铝胁迫下有机酸的作用 | 第16-17页 |
1.4 铝胁迫下柠檬酸分泌的调节途径 | 第17-20页 |
1.4.1 柠檬酸的体内代谢 | 第17-18页 |
1.4.2 柠檬酸转运子及其调控 | 第18-19页 |
1.4.3 柠檬酸分泌的其他调控机制 | 第19-20页 |
1.5 NO在植物体内的作用 | 第20-21页 |
1.5.1 NO的产生途径 | 第20页 |
1.5.2 NO在铝胁迫中的作用 | 第20-21页 |
1.6 研究目的与意义 | 第21-24页 |
第二章 材料和方法 | 第24-34页 |
2.1 实验材料和仪器设备 | 第24-25页 |
2.1.1 植物材料 | 第24页 |
2.1.2 仪器设备 | 第24页 |
2.1.3 实验试剂 | 第24-25页 |
2.2 实验方法 | 第25-34页 |
2.2.1 实验材料的培养和处理 | 第25页 |
2.2.2 根系柠檬酸分泌量的测定 | 第25页 |
2.2.3 根内柠檬酸含量的测定 | 第25页 |
2.2.4 CS和ACO酶活性的测定 | 第25-26页 |
2.2.5 质膜的分离和质膜H~+-ATPase酶活性的测定 | 第26页 |
2.2.6 MATE基因编码蛋白的生物信息学预测 | 第26-27页 |
2.2.7 Gm MATE13和Gm MATE47基因克隆 | 第27-28页 |
2.2.8 p CAMBIA1302 -MATE13和p CAMBIA1302-MATE47过表达载体的构建 | 第28-29页 |
2.2.9 大豆柠檬酸转运子的亚细胞定位 | 第29-30页 |
2.2.10 根伸长量的测定 | 第30页 |
2.2.11 NO含量的测定 | 第30页 |
2.2.12 苏木精染色分析 | 第30页 |
2.2.13 MATE13和MATE47在爪蟾卵母细胞中的功能验证 | 第30-31页 |
2.2.14 q RT-PCR分析 | 第31-32页 |
2.2.15 统计分析 | 第32-34页 |
第三章 结果与分析 | 第34-56页 |
3.1 铝胁迫下大豆根系柠檬酸分泌模式分析 | 第34-36页 |
3.1.1 不同铝浓度处理对根系柠檬酸分泌量的影响 | 第34页 |
3.1.2 铝处理不同时间对大豆根系柠檬酸分泌量的影响 | 第34-35页 |
3.1.3 铝处理对根尖不同区段柠檬酸分泌量的影响 | 第35-36页 |
3.2 铝胁迫下大豆根系柠檬酸分泌途径分析 | 第36-51页 |
3.2.1 铝胁迫下柠檬酸代谢途径对柠檬酸分泌的影响 | 第36-38页 |
3.2.2 铝胁迫下质膜H~+-ATPase对柠檬酸分泌的影响 | 第38-40页 |
3.2.3 铝胁迫响应的大豆柠檬酸转运子基因的筛选和鉴定 | 第40-51页 |
3.3 铝胁迫下NO对大豆根系柠檬酸分泌的调节作用 | 第51-53页 |
3.3.1 铝胁迫下外源NO对根伸长的影响 | 第51页 |
3.3.2 铝胁迫下NO对根系柠檬酸分泌和根尖铝含量的影响 | 第51-53页 |
3.4 铝胁迫下NO对大豆根系柠檬酸分泌的调控机制 | 第53-56页 |
3.4.1 铝胁迫下NO对柠檬酸代谢途径的调节作用 | 第53-54页 |
3.4.2 铝胁迫下NO对质膜H~+-ATPase的调节作用 | 第54-55页 |
3.4.3 铝胁迫下NO对柠檬酸转运子的调节作用 | 第55-56页 |
第四章 讨论 | 第56-62页 |
4.1 柠檬酸代谢途径参与了铝诱导根系柠檬酸分泌的调控 | 第56-57页 |
4.2 柠檬酸转运途径参与了铝诱导根系柠檬酸分泌的调控 | 第57-58页 |
4.3 铝胁迫下NO对柠檬酸分泌的调控作用 | 第58-59页 |
4.4 铝胁迫下NO对柠檬酸分泌的调控机制 | 第59-62页 |
第五章 结论 | 第62-64页 |
参考文献 | 第64-74页 |
致谢 | 第74-76页 |
攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第76-77页 |