| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 前言 | 第11-17页 |
| 研究现状、成果 | 第11-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-17页 |
| 一、α-MSH对早期糖尿病视网膜抗氧化和抗凋亡的保护作用 | 第17-35页 |
| 1.1 对象和方法 | 第17-24页 |
| 1.1.1 SD大鼠糖尿病模型的诱导 | 第17页 |
| 1.1.2 α-MSH玻璃体腔注射 | 第17页 |
| 1.1.3 视网膜中H_2O_2和NO~(2-)/NO~(3-)的含量测定 | 第17-18页 |
| 1.1.4 视网膜血管铺片 | 第18页 |
| 1.1.5 大鼠灌注和视网膜冰冻切片 | 第18页 |
| 1.1.6 视网膜冰冻切片和视网膜血管的TUNEL染色 | 第18-19页 |
| 1.1.7 投射电镜扫描 | 第19页 |
| 1.1.8 RT-PCR | 第19-23页 |
| 1.1.9 统计方法 | 第23-24页 |
| 1.2 结果 | 第24-32页 |
| 1.2.1 STZ诱导的糖尿病大鼠可表现出糖尿病症状,大鼠视网膜有MCRs的表达 | 第24-25页 |
| 1.2.2 α-MSH可以正常化早期糖尿病视网膜中的ROS水平 | 第25-26页 |
| 1.2.3 α-MSH可以抑制糖尿病早期视网膜血管内皮细胞凋亡 | 第26-27页 |
| 1.2.4 α-MSH可以抑制早期糖尿病视网膜神经细胞凋亡 | 第27-28页 |
| 1.2.5 α-MSH可以改善早期糖尿病视网膜超微结构的变化 | 第28-29页 |
| 1.2.6 α-MSH纠正糖尿病视网膜基因表达的异常 | 第29-31页 |
| 1.2.7 在早期糖尿病视网膜α-MSH抑制Foxo4转录因子的上调 | 第31-32页 |
| 1.3 讨论 | 第32-34页 |
| 1.3.1 α-MSH对早期糖尿病视网膜的抗氧化作用 | 第32-33页 |
| 1.3.2 α-MSH对早期糖尿病视网膜的抗凋亡作用 | 第33页 |
| 1.3.3 玻璃腔注射α-MSH具有给药剂量小,频次少,且能降低副作用的优点 | 第33-34页 |
| 1.4 小结 | 第34-35页 |
| 二、α-MSH对早期糖尿病视网膜抗氧化和抗凋亡的机制研究 | 第35-47页 |
| 2.1 对象和方法 | 第35-40页 |
| 2.1.1 高糖刺激的视网膜血管内皮细胞的细胞活力 | 第35页 |
| 2.1.2 高糖刺激的视网膜血管内皮细胞的的基因表达分析 | 第35-39页 |
| 2.1.3 高糖刺激后视网膜血管内皮细胞氧化应激分析 | 第39-40页 |
| 2.1.4 高糖刺激后视网膜血管内皮细胞凋亡分析 | 第40页 |
| 2.1.5 统计方法 | 第40页 |
| 2.2 结果 | 第40-45页 |
| 2.2.1 在视网膜血管内皮细胞α-MSH可以降低高糖刺激所导致的FOXO4的上调 | 第40-42页 |
| 2.2.2 视网膜血管内皮细胞过表达FOXO4抵消了α-MSH抗氧化应激的能力 | 第42-43页 |
| 2.2.3 视网膜血管内皮细胞过表达FOXO4抵消了α-MSH的抗凋亡能力 | 第43-45页 |
| 2.3 讨论 | 第45-46页 |
| 2.3.1 抑制FOXO4上调是α-MSH对糖尿病视网膜起到保护作用的重要机制 | 第45-46页 |
| 2.3.2 体外实验采用早期凋亡指标更全面地揭示α-MSH的抗凋亡作用 | 第46页 |
| 2.4 小结 | 第46-47页 |
| 全文结论 | 第47-48页 |
| 论文创新点 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第55-57页 |
| 综述 | 第57-65页 |
| 综述参考文献 | 第61-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
