摘要 | 第3-6页 |
ABSTRACT | 第6-9页 |
中英文缩略词对照表 | 第10-14页 |
前言 | 第14-15页 |
1 实验动物与材料 | 第15-17页 |
1.1 实验动物来源、饲养条件 | 第15页 |
1.2 主要的化学试剂 | 第15-16页 |
1.3 抗体信息 | 第16页 |
1.4 主要实验仪器 | 第16-17页 |
2 实验方法 | 第17-25页 |
2.1 动物分组 | 第17-18页 |
2.1.1 动物分组 | 第17页 |
2.1.2 动物基线比较分析 | 第17-18页 |
2.2 造模方法 | 第18-19页 |
2.2.1 变应性鼻炎大鼠模型的复制 | 第18-19页 |
2.2.2 肺气虚寒型大鼠模型的复制 | 第19页 |
2.3 实验标本采集 | 第19-20页 |
2.3.1 股动脉采血 | 第19页 |
2.3.2 鼻黏膜分离 | 第19-20页 |
2.3.3 肺及气管组织取材 | 第20页 |
2.4 观察指标与检测方法 | 第20-23页 |
2.4.1 大鼠行为学观察 | 第20页 |
2.4.2 观察大鼠进食量和造模前后体质量变化 | 第20-21页 |
2.4.3 检测大鼠血清IFN-γ、IL-4、SIgE、TNF-α水平 | 第21-22页 |
2.4.4 光镜下观察大鼠鼻黏膜、肺、气管病理组织学改变,了解炎性浸润情况 | 第22-23页 |
2.5 动物死亡说明 | 第23页 |
2.6 统计学方法 | 第23-24页 |
2.7 实验技术路线 | 第24-25页 |
3 实验结果 | 第25-41页 |
3.1 大鼠行为学观察 | 第25-32页 |
3.1.1 变应性鼻炎的行为学观察 | 第25-30页 |
3.1.2 肺气虚寒的行为学观察 | 第30-32页 |
3.2 实验室结果 | 第32-40页 |
3.2.1 比较各组大鼠实验前后体质量及进食量变化 | 第32-33页 |
3.2.2 大鼠血清IFN-γ、IL-4、SIgE、TNF-α水平 | 第33-37页 |
3.2.3 鼻腔黏膜组织病理学改变 | 第37-39页 |
3.2.4 气管组织病理学改变 | 第39-40页 |
3.2.5 肺组织病理学改变 | 第40页 |
3.3 肺气虚寒型变应性鼻炎动物模型复制成功 | 第40-41页 |
4.讨论 | 第41-60页 |
4.1 西方医学对变应性鼻炎的认识 | 第41-46页 |
4.1.1 变应性鼻炎的流行病学研究 | 第41-42页 |
4.1.2 变应性鼻炎的发病机制 | 第42-43页 |
4.1.3 变应性鼻炎的治疗现况 | 第43-46页 |
4.2 祖国医学对变应性鼻炎的认识 | 第46-50页 |
4.2.1 历史溯源 | 第46-47页 |
4.2.2 病因病机及辨证分型 | 第47-49页 |
4.2.3 中医治疗 | 第49-50页 |
4.3 病证结合动物模型的研究现况 | 第50-51页 |
4.3.1 病证结合动物的概念 | 第50页 |
4.3.2 建立病证结合动物模型的意义 | 第50页 |
4.3.3 病证结合动物模型的动态分析 | 第50-51页 |
4.4 肺气虚寒型动物模型的研究现况 | 第51-52页 |
4.5 变应性鼻炎动物模型的选择 | 第52-53页 |
4.6 建立肺气虚寒型变应性鼻炎的病证结合模型的必要性分析 | 第53-54页 |
4.7 实验室检测指标的选择原因 | 第54-55页 |
4.7.1 检测大鼠血清IFN-γ、IL-4水平的原因 | 第54页 |
4.7.2 检测大鼠血清SIgE水平的原因 | 第54页 |
4.7.3 检测大鼠血清TNF-α水平的原因 | 第54-55页 |
4.7.4 观察鼻黏膜、肺、气管组织病理学改变的原因 | 第55页 |
4.8 本实验中肺气虚寒型变应性鼻炎模型优势及创新 | 第55-56页 |
4.9 本实验的可行性分析 | 第56-57页 |
4.10 实验结果分析 | 第57-60页 |
4.10.1 动物行为学观察结果分析 | 第57-58页 |
4.10.2 进食量和体质量变化分析 | 第58页 |
4.10.3 免疫、病理结果分析 | 第58-59页 |
4.10.4 肺气虚寒型变应性鼻炎动物模型和单纯变应性鼻炎动物模型的区别 | 第59-60页 |
5.结论 | 第60-61页 |
问题与展望 | 第61-62页 |
致谢 | 第62-63页 |
参考文献 | 第63-69页 |
综述 | 第69-79页 |
参考文献 | 第76-79页 |
附件 | 第79-82页 |
附件一 实验相关表格 | 第79-81页 |
附件二 在读期间公开发表的学术论文、专著及科研成果 | 第81-82页 |