| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-23页 |
| 1.1 精原干细胞研究进展 | 第11-14页 |
| 1.1.1 精原干细胞生物学特征 | 第11页 |
| 1.1.2 精原干细胞分离纯化与体外培养 | 第11-12页 |
| 1.1.3 精原干细胞分子标记及应用 | 第12页 |
| 1.1.4 精原干细胞的移植 | 第12页 |
| 1.1.5 精原干细胞的自我更新与分化 | 第12-14页 |
| 1.1.6 精原干细胞的应用 | 第14页 |
| 1.2 组蛋白甲基化酶研究进展 | 第14-22页 |
| 1.2.1 组蛋白甲基化酶的生物学特性 | 第14-16页 |
| 1.2.2 组蛋白甲基化酶与细胞周期 | 第16-17页 |
| 1.2.3 组蛋白甲基化酶与疾病 | 第17-18页 |
| 1.2.4 组蛋白甲基化与染色质 | 第18-20页 |
| 1.2.5 组蛋白甲基化与精原干细胞 | 第20-21页 |
| 1.2.6 组蛋白甲基化酶 MLL1 | 第21-22页 |
| 1.3 本研究的目的及意义 | 第22-23页 |
| 第二章 Mll1 对小鼠精子发生的影响 | 第23-44页 |
| 2.1 材料与方法 | 第23-33页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第23页 |
| 2.1.2 试验试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.3 试验仪器 | 第24页 |
| 2.1.4 慢病毒包装系统 | 第24页 |
| 2.1.5 RNA 提取 | 第24-25页 |
| 2.1.6 反转录 PCR | 第25页 |
| 2.1.7 实时定量 PCR | 第25-26页 |
| 2.1.8 慢病毒载体构建 | 第26-31页 |
| 2.1.9 慢病毒包装 | 第31页 |
| 2.1.10 慢病毒滴度测定 | 第31-32页 |
| 2.1.11 病毒转导 GC-1 spg | 第32页 |
| 2.1.12 绘制细胞增殖曲线 | 第32页 |
| 2.1.13 慢病毒小鼠睾丸注射 | 第32页 |
| 2.1.14 小鼠睾丸包埋切片及 HE 染色、数据统计 | 第32-33页 |
| 2.2 结果 | 第33-40页 |
| 2.2.1 检测小鼠体内 Mll1 的表达 | 第33-34页 |
| 2.2.2 成功构建 Mll1 及 NC 的干扰载体 | 第34-36页 |
| 2.2.3 成功包装 Mll1 和 NC 慢病毒并测定其滴度 | 第36-37页 |
| 2.2.4 成功干扰 GC-1 spg 中 Mll1 的表达 | 第37-38页 |
| 2.2.5 细胞增殖检测 | 第38-39页 |
| 2.2.6 睾丸切片染色 | 第39-40页 |
| 2.2.7 功能基因检测 | 第40页 |
| 2.3 讨论 | 第40-44页 |
| 2.3.1 Mll1 的组织差异表达 | 第40-41页 |
| 2.3.2 shRNA 在基因干扰研究中的应用 | 第41页 |
| 2.3.3 shRNA 的设计原则 | 第41-42页 |
| 2.3.4 慢病毒包装系统 | 第42页 |
| 2.3.5 细胞增殖检测 | 第42页 |
| 2.3.6 睾丸注射技术 | 第42-43页 |
| 2.3.7 Mll1 与 SSCs 自我更新 | 第43-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 作者简介 | 第53页 |
