摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
英文缩略语 | 第10-14页 |
第一部分 :MicroRNA-634在胃癌细胞及组织中的表达水平及其表遗传学调控机制和临床病理特征 | 第14-26页 |
1 前言 | 第14-16页 |
2 材料和方法 | 第16-19页 |
2.1 主要仪器和试剂 | 第16-17页 |
2.1.1 主要仪器 | 第16页 |
2.1.2 主要试剂 | 第16-17页 |
2.2 临床病理组织和细胞系 | 第17页 |
2.3 实验方法 | 第17-19页 |
2.3.1 细胞培养 | 第17页 |
2.3.2 RNA提取和实时荧光定量PCR(qRT-PCR) | 第17-18页 |
2.3.3 DNA提取 | 第18页 |
2.3.4 DNA修饰 | 第18页 |
2.3.5 甲基化特异性PCR | 第18页 |
2.3.6 统计学方法 | 第18-19页 |
3 结果 | 第19-23页 |
3.1 miR-634在胃癌细胞系中表达下调与胃癌患者临床病理特征之间的关系 | 第19页 |
3.2 胃癌细胞系和癌组织中miR-634基因呈高甲基化 | 第19-23页 |
4 讨论 | 第23-25页 |
5 结论 | 第25-26页 |
第二部分 :miR-634和靶基因JAG1对胃癌细胞生物学功能的影响及临床意义 | 第26-41页 |
1 前言 | 第26-27页 |
2 材料和方法 | 第27-31页 |
2.1 主要仪器和试剂 | 第27-28页 |
2.1.1 主要仪器 | 第27页 |
2.1.2 主要试剂 | 第27-28页 |
2.2 临床病理组织和细胞系 | 第28页 |
2.3 实验方法 | 第28-30页 |
2.3.1 细胞培养 | 第28页 |
2.3.2 RNA提取和实时荧光定量PCR(qRT-PCR) | 第28-29页 |
2.3.3 荧光素酶实验 | 第29页 |
2.3.4 慢病毒转染 | 第29页 |
2.3.5 细胞划痕实验 | 第29页 |
2.3.6 Transwell侵袭实验 | 第29页 |
2.3.7 CCK8实验 | 第29-30页 |
2.3.8 平板克隆实验 | 第30页 |
2.3.9 Annexin-V细胞凋亡实验 | 第30页 |
2.4 统计学方法 | 第30-31页 |
3 结果 | 第31-39页 |
3.1 miR-634抑制胃癌细胞增殖、侵袭迁移能力 | 第31-34页 |
3.2 JAG1是miR-634的直接靶标 | 第34页 |
3.3 JAG1在胃癌癌组织和细胞高表达及其临床病理特征 | 第34-37页 |
3.4 miR-634和JAG1对胃癌预后的影响 | 第37-39页 |
4 讨论 | 第39-40页 |
5 结论 | 第40-41页 |
第三部分 :miR-634通过Jagged1抑制人胃癌上皮间质转化(EMT) | 第41-58页 |
1 前言 | 第41-42页 |
2 材料和方法 | 第42-46页 |
2.1 主要仪器和试剂 | 第42-43页 |
2.1.1 主要仪器 | 第42页 |
2.1.2 主要试剂 | 第42-43页 |
2.2 细胞和动物实验 | 第43页 |
2.3 实验方法 | 第43-45页 |
2.3.1 细胞培养 | 第44页 |
2.3.2 RNA提取和实时荧光定量PCR(qRT-PCR) | 第44页 |
2.3.3 慢病毒转染 | 第44页 |
2.3.4 细胞划痕实验 | 第44页 |
2.3.5 Transwell侵袭实验 | 第44-45页 |
2.3.6 平板克隆实验 | 第45页 |
2.3.7 Westernblot实验 | 第45页 |
2.4 统计分析 | 第45-46页 |
3 结果 | 第46-56页 |
3.1 miR-634在AGS细胞系中表达下调 | 第46页 |
3.2 JAG1在AGS细胞系中表达上调 | 第46-47页 |
3.3 在体外,miR-634抑制了GC细胞的增殖 | 第47-49页 |
3.4 miR-634在体外抑制GC细胞的迁移和侵袭 | 第49-51页 |
3.5 miR-634抑制体内肿瘤的生长 | 第51-52页 |
3.6 在体内,过表达的miR-634抑制了肿瘤的转移 | 第52-53页 |
3.7 miR-634参与调控了GC细胞的EMT | 第53-56页 |
4 讨论 | 第56-57页 |
5 结论 | 第57-58页 |
本研究创新性的自我评价 | 第58-59页 |
参考文献 | 第59-64页 |
综述 | 第64-86页 |
参考文献 | 第76-86页 |
在学期间科研成绩 | 第86-87页 |
致谢 | 第87-88页 |
个人简介 | 第88页 |