| 摘要 | 第8-12页 |
| ABSTRACT | 第12-16页 |
| 第一章 绪论 | 第17-48页 |
| 1 微流控芯片技术简介 | 第17-18页 |
| 2 MCE在线富集技术的概况 | 第18-25页 |
| 2.1 场放大富集(FASS) | 第19-20页 |
| 2.2 等速电泳(ITP) | 第20-21页 |
| 2.3 动态pH界面堆积(DpHJ) | 第21-22页 |
| 2.4 扫集(Sweeping) | 第22-24页 |
| 2.5 芯片固相萃取技术(SPE) | 第24-25页 |
| 3 MCE的检测系统 | 第25-29页 |
| 3.1 光学检测 | 第25-26页 |
| 3.2 电化学检测 | 第26-29页 |
| 3.3 质谱检测 | 第29页 |
| 4 MCE在生物科学及化学分析中的应用 | 第29-37页 |
| 4.1 MCE在核酸中的分析应用 | 第30-33页 |
| 4.2 MCE在蛋白质、多肽和小分子的分析应用 | 第33-35页 |
| 4.3 MCE在细胞分析中的应用 | 第35-37页 |
| 5 本文研究的意义和主要内容 | 第37-41页 |
| 参考文献 | 第41-48页 |
| 第二章 基于细菌特异性适配体的微流控芯片电泳检测牛奶中沙门氏菌的研究 | 第48-62页 |
| 1 前言 | 第48-50页 |
| 2 实验部分 | 第50-52页 |
| 2.1 化学试剂 | 第50页 |
| 2.2 细菌培养和计数 | 第50-51页 |
| 2.3 样品制备 | 第51页 |
| 2.4 微流控芯片电泳 | 第51-52页 |
| 3 结果与讨论 | 第52-59页 |
| 3.1 核酸适配体特异性结合细菌的条件 | 第52-54页 |
| 3.2 荧光染料浓度对核酸适配体结合细菌形成复合物的影响 | 第54-55页 |
| 3.3 MCE条件的优化 | 第55-56页 |
| 3.4 核酸适配体对细菌的特异性选择 | 第56-57页 |
| 3.5 ST1对鼠伤寒沙门氏菌的定量分析 | 第57-58页 |
| 3.6 牛奶实际样的分析应用 | 第58-59页 |
| 4 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-62页 |
| 第三章 微流控芯片电泳结合PCR技术检测食品中大肠杆菌、金黄色葡萄球菌和鼠伤寒沙门氏菌的研究 | 第62-73页 |
| 1 前言 | 第62-64页 |
| 2 实验部分 | 第64-66页 |
| 2.1 仪器和试剂 | 第64页 |
| 2.2 细菌培养和计数 | 第64-65页 |
| 2.3 细菌DNA的制备 | 第65页 |
| 2.4 PCR条件 | 第65-66页 |
| 2.5 DNA样本和DNA提取 | 第66页 |
| 3 结果与讨论 | 第66-71页 |
| 3.1 特异性基因的选择 | 第66-67页 |
| 3.2 MCE分离条件的探讨 | 第67-68页 |
| 3.3 MCE检测PCR产物 | 第68-70页 |
| 3.4 食品样品中病原体的检测 | 第70-71页 |
| 4 结论 | 第71页 |
| 参考文献 | 第71-73页 |
| 第四章 微流控芯片多重在线富集检测金黄色葡萄球菌的研究 | 第73-88页 |
| 1 前言 | 第73-76页 |
| 2 实验部分 | 第76-78页 |
| 2.1 仪器和试剂 | 第76页 |
| 2.2 溶液 | 第76页 |
| 2.3 衍生反应 | 第76-77页 |
| 2.4 细菌悬浊液的制备 | 第77页 |
| 2.5 MCE条件 | 第77-78页 |
| 3 结果与讨论 | 第78-84页 |
| 3.1 万古霉素中Cy5标记的衍生化条件 | 第78-79页 |
| 3.2 金黄色葡萄球菌中Cy5-van标记的衍生化条件的优化 | 第79-80页 |
| 3.3 场放大进样和反转电场堆积的多重富集在MCE上的优化 | 第80-83页 |
| 3.4 方法验证 | 第83-84页 |
| 4 结论 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-88页 |
| 第五章 微流控芯片在线富集检测尿液中神经递质的研究 | 第88-102页 |
| 1 前言 | 第88-90页 |
| 2 实验部分 | 第90-92页 |
| 2.1 仪器和试剂 | 第90页 |
| 2.2 溶液的制备 | 第90页 |
| 2.3 衍生化过程 | 第90页 |
| 2.4 尿液样本的准备 | 第90-91页 |
| 2.5 MCE条件 | 第91-92页 |
| 3 结果与讨论 | 第92-99页 |
| 3.1 场放大样品堆积法(FASS)和反转电场堆积法(RFS)机理 | 第92页 |
| 3.2 Cy5与神经递质衍生条件的优化 | 第92-93页 |
| 3.3 MCE分离条件的最优化 | 第93-95页 |
| 3.4 多重富集条件的优化 | 第95-97页 |
| 3.5 方法验证 | 第97-98页 |
| 3.6 尿液实际样的分析 | 第98-99页 |
| 4 结论 | 第99页 |
| 参考文献 | 第99-102页 |
| 第六章 聚多巴胺/纳米金修饰微流控芯片在线富集检测细菌和HaCaT细胞中谷胱甘肽的研究 | 第102-120页 |
| 1 前言 | 第102-104页 |
| 2 实验部分 | 第104-107页 |
| 2.1 仪器和试剂 | 第104页 |
| 2.2 溶液的准备 | 第104页 |
| 2.3 衍生化步骤 | 第104-105页 |
| 2.4 样品的制备和衍生化 | 第105页 |
| 2.5 纳米金的制备 | 第105-106页 |
| 2.6 PDA/AuNP修饰芯片通道的制备 | 第106-107页 |
| 3 结果和讨论 | 第107-117页 |
| 3.1 PDA/AuNPs的表征 | 第107-109页 |
| 3.2 电泳分离 | 第109-110页 |
| 3.3 场放大样品堆积的影响 | 第110-111页 |
| 3.4 其它电泳分离条件的优化 | 第111-114页 |
| 3.5 衍生条件的优化 | 第114-115页 |
| 3.6 方法验证 | 第115-116页 |
| 3.7 实际生物样品的分析 | 第116-117页 |
| 4 结论 | 第117-118页 |
| 参考文献 | 第118-120页 |
| 第七章 聚多巴胺/纳米金/DNA修饰微流控芯片分离手性氨基酸的研究 | 第120-136页 |
| 1 前言 | 第120-122页 |
| 2 实验部分 | 第122-127页 |
| 2.1 仪器和试剂 | 第122-123页 |
| 2.2 细菌培养和计数 | 第123页 |
| 2.3 细菌DNA的提取 | 第123页 |
| 2.4 沙门氏菌特异DNA片段的制备 | 第123-124页 |
| 2.5 溶液的制备 | 第124-125页 |
| 2.6 PDA/AuNPs/DNA修饰微流控芯片通道 | 第125-126页 |
| 2.7 衍生步骤 | 第126-127页 |
| 3 结果与讨论 | 第127-133页 |
| 3.1 对PDA/AuNPs/DNA的表征 | 第127-129页 |
| 3.2 手性氨基酸对映体的分离 | 第129-131页 |
| 3.3 电泳分离条件的优化 | 第131-132页 |
| 3.4 对对映体的重现性和稳定性的考查 | 第132-133页 |
| 4 结论 | 第133-134页 |
| 参考文献 | 第134-136页 |
| 附录：博士在读期间科研成果 | 第136-138页 |
| 致谢 | 第138-139页 |
